دوره 9، شماره 24 - ( زمستان 1396 )
جلد 9 شماره 24 صفحات 191-186 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
sahraro A, Zarei A, Mirjalili M H, Akbarpoor V, Corchete P. (2018). Effects of Vanadyl Sulfate on Media Consumption by Satureja khuzistanica Cells and Rosmarinic Acid Biosynthesis. jcb. 9(24), 186-191. doi:10.29252/jcb.9.24.186
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-927-fa.html
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-927-fa.html
صحرارو امیر، زارعی عبدالکریم، میرجلیلی محمد حسین، اکبرپور وحید، کورچته پیوریفیکاسیون. اثر وانادیل سولفات بر میزان مصرف محیط کشت توسط سلول های مرزه
خوزستانی و بیوسنتز رزمارینیک اسید
پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی 1396; 9 (24) :191-186 10.29252/jcb.9.24.186
دانشگاه گیلان
چکیده: (3575 مشاهده)
کاربرد بیوتکنولوژی برای تولید متابولیتهای دارویی مهم از سلولهای گیاهی و همچنین افزایش تولید این متابولیتها با بهره گیری از الیسیتورهای زیستی و غیرزیستی مورد توجه پژوهشگران میباشد. این تحقیق بهمنظور بررسی کاربرد ماده وانادیل سولفات (الیسیتور غیرزیستی) بر الگوی مصرف محیط کشت توسط سلولهای مرزه خوزستانی و همچنین اثر آن بر تولید رزمارینیک اسید انجام گرفت. برای این منظور سلولهای حاصل از کشت سوسپانسیون سلولی مرزه خوزستانی پس از 4 بار واکشت در محیط کشت مایع بی-5 به همراه پنج میلیگرم در لیتر بی اِی (بنزیل آدنین) و یک میلیگرم در لیتر آی بی اِی
(ایندول بوتریک اسید) کشت گردید. غلظتهای وانادیل سولفات صفر، 5/2 و 5 میلیگرم در لیتر بکار رفت. نتایج نشان داد که بیشترین میزان مصرف محیط کشت توسط سلولهای کشت شده در وانادیل سولفات 5/2 میلیگرم در لیتر بوده است. این در حالی است که وزنخشک بدست آمده در پایان دوره، برای سلولهای این تیمار کمتر از بقیه بود. همچنین تیمار 5 میلیگرم در لیتر وانادیل سولفات، وزن خشکی تقریبا برابر با شاهد نشان داد. بیشترین میزان بیوسنتز رزمارینیک اسید در پایان دوره مربوط به غلظت 5/2 میلیگرم در لیتر بود که نشاندهنده این است که کاربرد این ماده میتواند اثر مثبتی در بیوسنتز ماده دارویی رزمارینیک اسید داشته باشد. بطور کلی نتایج این پژوهش مشخص کرد که کاربرد برخی غلظتهای ماده وانادیل سولفات به عنوان یک الیسیتور غیر زیستی در مرزه خوزستانی توانست زیتوده خشک را در حد شرایط نرمال حفظ کرده و از طرف دیگر افزایش بیوسنتز ماده دارویی رزمارینیک اسید را نیز در پی داشت. بنابراین میتوان این ماده را بهعنوان یکی از مواد آیندهدار در
کشتهای سوسپانسیون سلولی مرزه خوزستانی برای افزایش تولید رزمارینیک اسید پیشنهاد کرد.
(ایندول بوتریک اسید) کشت گردید. غلظتهای وانادیل سولفات صفر، 5/2 و 5 میلیگرم در لیتر بکار رفت. نتایج نشان داد که بیشترین میزان مصرف محیط کشت توسط سلولهای کشت شده در وانادیل سولفات 5/2 میلیگرم در لیتر بوده است. این در حالی است که وزنخشک بدست آمده در پایان دوره، برای سلولهای این تیمار کمتر از بقیه بود. همچنین تیمار 5 میلیگرم در لیتر وانادیل سولفات، وزن خشکی تقریبا برابر با شاهد نشان داد. بیشترین میزان بیوسنتز رزمارینیک اسید در پایان دوره مربوط به غلظت 5/2 میلیگرم در لیتر بود که نشاندهنده این است که کاربرد این ماده میتواند اثر مثبتی در بیوسنتز ماده دارویی رزمارینیک اسید داشته باشد. بطور کلی نتایج این پژوهش مشخص کرد که کاربرد برخی غلظتهای ماده وانادیل سولفات به عنوان یک الیسیتور غیر زیستی در مرزه خوزستانی توانست زیتوده خشک را در حد شرایط نرمال حفظ کرده و از طرف دیگر افزایش بیوسنتز ماده دارویی رزمارینیک اسید را نیز در پی داشت. بنابراین میتوان این ماده را بهعنوان یکی از مواد آیندهدار در
کشتهای سوسپانسیون سلولی مرزه خوزستانی برای افزایش تولید رزمارینیک اسید پیشنهاد کرد.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
اصلاح نباتات، بیومتری
دریافت: 1396/12/19 | ویرایش نهایی: 1398/1/25 | پذیرش: 1396/12/19 | انتشار: 1396/12/19
دریافت: 1396/12/19 | ویرایش نهایی: 1398/1/25 | پذیرش: 1396/12/19 | انتشار: 1396/12/19
فهرست منابع
1. Baravardi, H., G.A. Ranjbar and S. Kamali Farah Abadi. 2015. Comparison of amount of callus induction in Juniperus Excelsa on MS and WPM culture media using different concentration of NAA, 2,4-D and Kin. Journal of Crop Breeding, 7(16): 149-157.
2. Cusido, R.M., J. Palazon, A. Navia-Osorio, A. Mallol, M. Bonfill and C. Morales. 1999. Production of taxol and baccatin III by a selected Taxus baccata line and its derived cell suspension culture. Plant Science, 146(2): 101-107. [DOI:10.1016/S0168-9452(99)00093-X]
3. Elyasi, L., A.A. Mehrabi, M. Seyedi and Z. Safari. 2016. Optimization of callus culture of Satureja Bachtiarica L. using different explants and concentrations of growth regulators. Journal of Crop Breeding, 8(20): 124-132.
4. Gamborg, O.L., R.A. Millerm and K. Ojima. 1968. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Experimental Cell Research, 50: 151-158. [DOI:10.1016/0014-4827(68)90403-5]
5. Georgiev, M., S. Kuzeva, A. Kovacheva, E. Pavlov and M. Ilieva. 2006. Enhanced Rosmarinic Acid Production by Lavandula vera MM Cell Suspension Culture through Elicitation with Vanadyl Sulfate. Zeitschrift fur Naturforschung, 61: 241-244. [DOI:10.1515/znc-2006-3-414]
6. Golchoubian, S., G. Ranjbar and S.K. Kazemitabar. 2011. In Vitro Micro Propagation of Aloe vera L. Journal of Crop Breeding, 3(7): 71-78
7. Montesano, M., G. Brander and E. TapioPalva. 2003. Pathogen derived elicitors: searching for receptors in plants. Molecular Plant Pathology, 4(1): 73-79. [DOI:10.1046/j.1364-3703.2003.00150.x]
8. Nürnberger, T. 1999. Signal Perception in Plant Pathogen Defense. Cellular and Molecular Life Sciences, 55: 167-182. [DOI:10.1007/s000180050283]
9. Ravishankar, G.A. and L.V. Venkataraman. 1993. Role of plant cell culture in food biotechnology: current trends, limitations and future prospects. In: Prakash J, Pierik RLM, editors. Plant biotechnology: commercial prospects and problems. New Delhi: Oxford IBH Press, 255-274.
10. Sahraroo, A., M. Babalar, M.H. Mirjalili, M.R. Fattahi Moghadam and S. Nejad Ebrahimi. 2014. In vitro callus induction and rosmarinic acid quantification in callus culture of Satureja khuzistanica Jamzad (Lamiaceae). Iranian Journal of Pharmaceutical Research, 13(4): 1445-1454
11. Sahraroo, A., M.H. Mirjalili and P. Corchete. 2013. Production of rosmarinic acid in cell culture of Satureja khuzistanica. XIII Congresso Luso-Espanhol de Fisiologia Vegetal, 182 pp., Lisbon, Portugal.
12. Vanisree, M., C.Y. Lee, S.F. Lo, S.M. Nalawade, C.Y. Lin and H.S. Tsay. 2004. Studies on the production of some important secondary metabolites from medicinal plants by plant tissue cultures. Botanical Bulletin, 45: 1-22.
13. Zhao, J., L.C. Davis and R.Verpoorte. 2005. Elicitor signal transduction leading to production of plant secondary metabolites. Biotechnology Advances, 23: 283-333. [DOI:10.1016/j.biotechadv.2005.01.003]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
