دوره 12، شماره 33 - ( بهار 1399 )                   جلد 12 شماره 33 صفحات 192-201 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Olyaei Z, Asghari Zakaria R, Zare N, Berenji D. Effect of Different Plant Growth Regulators on Callus Induction and Regeneration of Papaver fugax Poir.. jcb. 2020; 12 (33) :192-201
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1104-fa.html
علیایی زهرا، اصغری زکریا رسول، زارع ناصر، برنجی داود. تأثیر تنظیم ‌کننده‌ های مختلف رشد گیاهی بر کالوس زایی و باززایی گونه‌ دارویی Papaver fugax Poir.. پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی. 1399; 12 (33) :192-201

URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1104-fa.html


گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشگاه محقق اردبیلی
چکیده:   (338 مشاهده)
گونۀ Papaver fugax Poir. از بخشMeconidium  جنس Papaver منبع مهمی برای آلکالوئید‌ها است. با توجه به وجود تبائین، مورفین و کدئین در این گیاه، مطالعات بیوتکنولوژی به ویژه کشت درون شیشه ­ای این گیاه حائز اهمیت است. در این پژوهش تولید کالوس و باززایی درون‌شیشه‏‌ای این گونه از ریزنمونه‌های برگ در محیط ‌کشت MS حاوی سطوح مختلف تنظیم‌کننده‌‌های رشد گیاهی نفتالین استیک اسید (NAA)، 2،4 دیکلروفنوکسی استیک اسید ((2,4-D، کینتین ((Kin و بنزیل آدنین پورین (BAP) در دمای 25 درجه سانتی‌گراد و دوره نوری 16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی در قالب طرح کاملا تصادفی با سه تکرار بررسی شد. تجزیه واریانس داده‌ها نشان داد که از لحاظ درصد کالوس­زایی و وزن تر کالوس اختلاف معنی‌داری بین محیط‌های مختلف کشت در سطح احتمال یک درصد وجود دارد. بر اساس نتایج حاصل، محیط ‌کشت مناسب برای تولید کالوس در ریزنمونه برگی، محیط ‌کشت MS حاوی 1 میلی‌گرم در لیتر NAA و 5/0 یا 1 میلی‌گرم در لیتر از BAP بود. بیشترین مقدار وزن تر کالوس در محیط ‌کشت MS حاوی  NAA و BAP هر یک به میزان 1 میلی‌گرم در لیتر به دست آمد. باززایی درون‌شیشه‏‌ای این گونه از ریزنمونه‌های برگ در محیط ‌کشت (MS) حاوی سطوح مختلف NAA، Kin وBAP مطالعه شد و بهترین محیط ‌کشت برای ساقه‌زایی محیط ‌کشت MS حاوی Kin و NAA هر یک به میزان 1 میلی‌گرم در لیتر بود. با بررسی ریشه‌زایی گیاهچه‌ها در محیط کشت MS حاوی سطوح مختلف ایندول استیک اسید (IAA) به همراهKin  یا BAP، بیشترین درصد ریشه ­زایی در محیط ‌کشت MS حاوی IAA و Kin هر یک به میزان 1 میلی‌گرم در لیتر به دست آمد.
متن کامل [PDF 941 kb]   (65 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: بيوتكنولوژي گياهي
دریافت: 1398/10/14 | ویرایش نهایی: 1399/4/9 | پذیرش: 1398/11/7 | انتشار: 1399/2/29

فهرست منابع
1. Asghari Zakaria, R., M. Haghighat Hour and N. Zare. 2011. Callus production and regeneration of the medicinal plant Papaver orientale. African Journal of Biotechnology, 10(54): 11152-11156. [DOI:10.5897/AJB11.204]
2. Baskaran, P., B. Raja Rajeswari and N. Jayabalan. 2006. Development of an In vitro regeneration system in sorghum [Sorghum bicolor (L.) Moench] using root transverse thin cell layers (tTCLs). Turkish Journal of Botany, 30: 1- 9.
3. Bolta, I., E. Dea Bari, B. Bohanec and S. Andrenek. .2000. A preliminary investigation of ursolic acid (UA) in cell suspension culture of Salvia officinalis. Plant Cell, Tissue Organ Culture, 62: 57-63. [DOI:10.1023/A:1006498431099]
4. Chenshu, A., X. Wang, X. Yuan, B. Zhao and Y. Wang. 2003. Optimization of cryopreservation of Artemisia annua L. callus. Biotechnology Letters, 25: 35-38. [DOI:10.1023/A:1021717828907]
5. Daneshvar, Sh. 2005. Adventitious shoot regeneration in Papaver bracteatum and Papaver pseudo-orientale. MS thesis in plant breeding of Ankara University. Ankara. Turkey.
6. Day, K.B., J. Draper and H. Smith. 1986. Plant regeneration and thebaine content of plants derived from callus culture of Papaver bracteatum. Plant Cell, 5:471-474. [DOI:10.1007/BF00269645]
7. Fairbairn, J.W. and F. Hakim. 1973. Papaver bracteatum Lindl. : A new plant source of opiates. Journal of Pharmacy and Pharmacology 25: 353-358. [DOI:10.1111/j.2042-7158.1973.tb10028.x]
8. Fakhari, A.R., S. Nojavan, S.N. Ebrahimi and C.J. Evenhuis. 2010. Optimized ultrasound-assisted extraction procedure for the analysis of opium alkaloids in Papaver plants by cyclodextrin-modified capillary electrophoresis. Journal of Separation Science, 33(14): 2153-2159. [DOI:10.1002/jssc.201000135]
9. Gang, Y.Y., G.S. Du, D.J. Shi, M. Z. Wang, X.D. Li and Z.L. Hua. 2003. Establishment of In vitro regeneration system of the Atrichum mosses. Acta Botanica Sinica, 45: 1475-1480.
10. Haghighat Hour, M., R. Asghari Zakaria and N. Zare. 2012. Callus production and regeneration of medicinal plant Papaver pseudo-orientale under In vitro conditions. Iranian Journal of Plant Biology 3(10): 11-22 (In Persian).
11. Hosseini B., A. Salimi and A. Sharafi. 2015. A survey of the effect of explants type, plant growth regulators and activated charcoal on callus induction in Papaver bracteatum. Iranian Journal of Plant Biology, 7(25): 29-42 (In Persian).
12. Ilahi, I. and E.G. Ghauri. 1994. Regeneration in cultures of Papaver bracteatum as influenced by growth hormones and temperature. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 38: 81-83. [DOI:10.1007/BF00034450]
13. Kamo, K.K., W. Kimoto, A.F. Hsu, P.G. Mahlberg and D.D. Bills. 1982. Morphinan alkaloids in cultured tissues and re-differentiated organs of Papaver somniferum. Phytochemistry, 21(1): 219-222. [DOI:10.1016/0031-9422(82)80047-2]
14. Kaya, N. and B. Lockwood. 1999. A Study of the Alkaloids in callusing plant tissues from a range of Turkish cultivars of Papaver somniferum. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 23: 377-381.
15. Lavania, U.C. and S. Srivastava. 1999. Quantitative delineation of karyotype variation in Papaver as a measure of phylogenetic differentiation and origin. Current science, 77: 429-435.
16. Leonard, E., W. Runguphan, S.O. Connor and K.J. Prather. 2009. Opportunity in metabolic engineering to facilitate scalable alkaloid production. Nature Chemical Biology, 5(5): 292-300. [DOI:10.1038/nchembio.160]
17. Mohammadi, F., R. Heidari, S. Hosieni and R. Jamei. 2015. Extraction and determination of morphinane alkaloids from different parts of three Papaver species in the flowering stage using HPLC. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 31(4): 563-573 (In Persian).
18. Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiologia Planetarium, 15: 473-479. [DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x]
19. Rao, S., P. Patil, and C.P. Kaviraj. 2005. Callus induction and organogenesis from various explants in Vinga radiata (L.). Indian Journal of Biotechnology, 4(4): 556-560.
20. Rostampour, S., S. Hashemi and A. Dehestani. 2010. In vitro regeneration of Persian poppy (Papaver bracteatum). Biologia, Section Cellular and Molecular Biology, 65(4): 647-652. [DOI:10.2478/s11756-010-0079-6]
21. Salehi, P., A. Sonoboli, A. Fakhari Zavareh, F. Sefidkon, M. Dayeni and B. Cheraghi. 2007. Narcotic alkaloids of four Papaver species from Iran. Zeitschrift fur Naturforschung, 62: 16-18. [DOI:10.1515/znc-2007-1-203]
22. Seddigh, M.D., G. Jolliff, W.M. Calhoun and J. Crane. 1982. Papaver bracteatum potential commercial source of codeine. Economic Botany, 36(4): 433-441. [DOI:10.1007/BF02862702]
23. Sedaghat, B., N. Babaeian, N. Bagheri and H. Salehian Aghblaq.2015. Effect of leaf explants types and various levels of 2, 4-D on callus induction and plant regeneration in Anthurium andraeanum. Journal of Crop Breeding, 8: 203-208 (In Persian).
24. Shafiee, A., Z. Mahmoudi and N. Samadi. 1997. Alkaloids of Papaveraceae XVI. Alkaloids of Papaver fugax population Tarom. Journal of Science I. R. Iran, 8(3): 166-169.
25. Soniya, E.V. and M. Sujitha. 2006. An efficient In vitro propagation of Aristolochia indica. Biologia Plantarum, 50: 272-274. [DOI:10.1007/s10535-006-0018-0]
26. Swankar, P.L. and S.P. Bohra. 1989. Regeneration of shoots buds from callus cultures of Papaver somniferum. Current Science, 58: 1382-1384.
27. Tripathi, L. and J.N. Tripathi. 2003. Role of biotechnology in medicinal plants. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 2: 243-253. [DOI:10.4314/tjpr.v2i2.14607]
28. Valizadeh, M. 2017. Regeneration of medicinal plant Anthemis hyalina DC. Journal of Crop Breeding, 9: 76-81 (In Persian). [DOI:10.29252/jcb.9.21.76]
29. Vanisree, M., L. Chen-Yue, L. Shu-Fung, S.N. Nalawade, C.Y. Lin and T. Hsinsheng. 2004. Studies on the production of some important secondary metabolites from medicinal plants by plant tissue culture. Botanical Bulletin of Academia Sinica, 45: 1-22.
30. Yoshikawa, T. and T. Furuya. 1983. Regeneration and In vitro flowering of plants derived from callus cultures of opium poppy (Papaver somniferum). Experientia, 39(9): 1031-1033. [DOI:10.1007/BF01989788]
31. Zargari, A. 1992. Medicinal Plants. 4th edition, Tehran University Press, Tehran, pp: 28-42 (In Persian).

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2020 All Rights Reserved | Journal of Crop Breeding

Designed & Developed by : Yektaweb