دوره 8، شماره 18 - ( تابستان 1395 )
جلد 8 شماره 18 صفحات 143-134 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
(2016). Association Mapping of Agronomic Traits in Oriental Tobacco. jcb. 8(18), 134-143. doi:10.29252/jcb.8.18.134
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-649-fa.html
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-649-fa.html
هوشیاردل فرامرز، درویش زاده رضا، بصیرنیا اشکان، حاتمی ملکی حمید. نقشه یابی ارتباطی صفات زراعی در توتون‌های شرقی (Nicotiana tabacum L.) پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی 1395; 8 (18) :143-134 10.29252/jcb.8.18.134
چکیده: (3756 مشاهده)
توتون (Nicotiana tabacum L.) یکی از محصولات با ارزش کشاورزی و صنعتی است. مطالعه اکثر صفات مهم در توتون، به دلیل ماهیت کمّی، کنترل چندژنی و تاثیرپذیری از عوامل محیطی دشوار است. در میان روشهای مختلف مطالعه صفات کمی، نقشهیابی ارتباطی به واسطه استفاده از اطلاعات فنوتیپی و نشانگرهای مولکولی DNA، از جمله کاراترین روشها برای این منظور است. در این تحقیق، ارزیابی فنوتیپی 100 ژنوتیپ توتون شرقی در قالب طرح لاتیس ساده ۱۰ × ۱۰ با دو تکرار در مزرعه تحقیقاتی مرکز تحقیقات توتون ارومیه انجام گرفت. صفات مختلف زراعی شامل ارتفاع بوته (PH)، قطر ساقه (SD)، تعداد روز تا ۵۰ درصد گلدهی (D50F)، تعداد برگ (LN)، طول برگ (LL)، عرض برگ (LW)، عملکرد برگ تر در کرت (FLYP) و عملکرد برگ خشک در کرت (DLYP) اندازهگیری شدند. انگشتنگاری 90 ژنوتیپ از 100 ژنوتیپ با استفاده از ۲۶ جفت آغازگر
ریزماهواره انجام گرفت. بررسی ساختار جمعیت ژرمپلاسمهای مورد مطالعه با استفاده از نرمافزار Structure آنها را به سه زیر مجموعه تقسیم کرد. فقدان تعادل پیوستگی ژنی و تجزیه ارتباط بین نشانگر و صفات مورد مطالعه با استفاده از نرمافزار TASSEL 2.1 انجام شد. نتایج مربوط به شاخصهای فقدان تعادل پیوستگی ژنی نشان داد که ارزش r2 بین 00001/0 الی 267/0 با میانگین R2 برابر با 027/0 و همچنین مقدار D´ بین 0065/0 الی ۱ با میانگین 242/0 بوده است. با استفاده از مکانیابی ارتباطی براساس مدل GLM و MLM بهترتیب ۱۶ و 10 نشان گر شناسایی گردید که ارتباط معنیدار با عوامل کنترلکننده صفات زراعی داشتند. در این مطالعه نشان گر PT30159 با صفات تعداد برگ، ارتفاع بوته و تعداد روز تا ۵۰ درصد گلدهی و نشانگر PT30046 با صفات طول برگ و قطر ساقه و نشانگر PT30292 با صفات قطر ساقه و تعداد روز تا ۵۰ درصد گلدهی پیوستگی داشته و هممکان بودند. وجود نشانگرهای هممکان در بهنژادی گیاهی موثر میباشد.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
اصلاح نباتات
دریافت: 1395/8/18 | پذیرش: 1395/8/18 | انتشار: 1395/8/18
دریافت: 1395/8/18 | پذیرش: 1395/8/18 | انتشار: 1395/8/18
فهرست منابع
1. Abdurakhmonov, I.Y., R.J. Kohel, J.Z. Yu, A.E. Pepper, A.A. Abdullaev, F.N. Kushanov, I.B. Salakhutdinov, Z.T. Buriev, S. Saha, B.E. Scheffler, J.N. Jenkins and A. Abdukarimov. 2008. Molecular diversity and association mapping of fiber quality traits in exotic G. hirsutum L. germplasm. Genomics, 92: 478-487. [DOI:10.1016/j.ygeno.2008.07.013]
2. ftp://ftp.fao.org/docrep/fao/006/y4956e/y4956e00.pdf (Projections of tobacco production, consumption and trade to the year 2010, Food and Agriculture Organization of the United Nations Rome, 2003). 107 pp.
3. Ataii, R., V. Mohammadi, A.R. Taleai and M.R. Nagavi. 2013. Association mapping of root traits in barley. Iranian Journal of Field Crop Science, 44: 347-357.
4. Basirnia, A., H. Hatami Maleki, R. Darvishzadeh and F. Ghavami. 2014. Mixed linear model association mapping for low chloride accumulation rate in oriental-type tobacco (Nicotiana tabaccum L.) germplasm. Journal of Plant Interactions, 9: 666-672. [DOI:10.1080/17429145.2014.893453]
5. Bindler, G., J. Plieske, N. Bakaher, I. Gunduz, N. Ivanov, R. Van der Hoeven, M. Ganal and P. Donini. 2011. A high density genetic map of tobacco (Nicotiana tabacum L.) obtained from large scale microsatellite marker development. Theoretical and Applied Genetics, 123: 219-230.
6. Bindler, G., R. Van der Hoeven, I. Gunduz, J. Plieske, M. Ganal, L. Rossi, F. Gadani and P. Donini. 2007. A microsatellite marker based linkage map of tobacco. Theoretical and Applied Genetics, 114: 341-349. [DOI:10.1007/s00122-006-0437-5]
7. Breseghello, F. and M. Sorrells. 2006. Association mapping of kernel size and milling quality in wheat (Triticum aestivum L.) cultivars. Genetics, 172: 1165-1177. [DOI:10.1534/genetics.105.044586]
8. Buckler, E., T. Casstevens, P. Bradbury and Z. Zhang. 2009. Trait Analysis by Association, Evolution and Linkage (TASSEL) Version 2.1, User Manual, Cornell University, Ithaca, NY, USA. 96 pp.
9. Dadras, A.R., H. Sabouri, G. Mohammadi Nejad, A. Sabouri and M. Shoai-Deylami. 2014. Association analysis, genetic diversity and structure analysis of tobacco based on AFLP markers. Molecular Biology Report, 41: 3317-29. [DOI:10.1007/s11033-014-3194-6]
10. Darvishzadeh, R., S.R. Alavi and A. Sarrafi. 2009. Genetic variability for chlorine concentration in oriental tobacco genotypes. Archives of Agronomy and Soil Science, 57: 167-177. [DOI:10.1080/03650340903286414]
11. D'hoop, B.B., M.J. Paulo, K. Kowitwanich, M. Sengers, R.G.F. Visser, H.J. Van Eck and F.A. Van Eeuwijk. 2010. Population structure and linkage disequilibrium unraveled in tetraploid potato. Theoretical and Applied Genetics, 121: 1151-1170. [DOI:10.1007/s00122-010-1379-5]
12. Doyle, J.J. and J.L. Doyle. 1987. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue. Phytochemistry, 19: 11-15.
13. Evanno, G., S. Regnaut and J. Goudet. 2005. Detecting the number of clusters of individuals using the software STRUCTURE: a simulation study. Molecular Ecology, 14: 2611-2620. [DOI:10.1111/j.1365-294X.2005.02553.x]
14. Fricano, A., N. Bakaher, M. Del Corvo, P. Piffanelli, P. Donini, A. Stella, V. Nikolai, N.V. Ivanov and C. Pozz. 2012. Molecular diversity, population structure and linkage disequilibrium in a worldwide collection of tobacco (Nicotiana tabacum L.) germplasm. BMC Genetics, 13: 18 pp.
15. Fusari, C.M., J.A.D. Rienzo, C. Troglia, V. Nishinakamasu, M.V. Moreno, C. Maringolo, F. Quiroz, D. Álvarez, A. Escande, E. Hopp, R. Heinz, V.V. Lia and N.B. Paniego. 2012. Association mapping in sunflower for Sclerotinia head rot resistance. BMC Plant Biology, 12: 1-13. [DOI:10.1186/1471-2229-12-93]
16. Julio, E., B. Denoyes-Rothan, J.L. Verrier and F. Dorlhac de Borne. 2006. Detection of QTLs linked to leaf and smoke properties in Nicotiana tabacum based on a study of 114 recombinant inbred lines. Molecular Breeding, 18: 69-91. [DOI:10.1007/s11032-006-9019-0]
17. Jun, T.H., K. Van, M.Y. Kim, H.S. Lee and D.R. Walker. 2007. Association analysis using SSR markers to find QTL for seed protein content in soybean. Euphytica, 162: 179-191. [DOI:10.1007/s10681-007-9491-6]
18. Kalia, R.K., M.K. Rai, S. Kalia, R. Singh and A.K. Dhawan. 2011. Microsatellite markers: an overview of the recent progress in plants. Euphytica, 177: 309-334. [DOI:10.1007/s10681-010-0286-9]
19. Kraakman, A.T.W., F. Martínez, B. Mussiraliev, F.A. Van Eeuwijk and R.E. Niks. 2006. Linkage disequilibrium mapping of morphological, resistance and other agronomically relevant traits in modern spring barley cultivars. Molecular Breeding, 17: 41-58. [DOI:10.1007/s11032-005-1119-8]
20. Li-Hua, L., C. Mei-Xia, Z. Dong-Xin, C. Shun-Hui, T. Ai-Fen, L. Yan-Kun, M.A. Hong-Bo, Q.A. Jian-Min and G. Yu-Chun. 2011. QTL Analysis of six important traits in tobacco (Nicotiana tabacum L.). Acta Agronomica Sinica, 37: 1577-1584. [DOI:10.3724/SP.J.1006.2011.01577]
21. Mannai, Y.E., T. Shehzad and K. Okuno. 2011. Variation in flowering time in sorghum core collection and mapping of QTLs controlling flowering time by association analysis. Genetic Resources and Crop Evolution, 58: 983-989. [DOI:10.1007/s10722-011-9737-y]
22. Movafegh, S., B. Rabiee, A. Zare-Feizabadi and G. Taheri. 2009. Mapping QTLs controlling yield in two Iranian rice cultivars-F2 populations. Iranian Journal of Agricultural Research, 7: 673-683.
23. Rafalski, A. and M. Morgante. 2004. Corn and humans: recombination and linkage disequilibrium in two genomes of similar size. Trends Genetics, 20: 103-111. [DOI:10.1016/j.tig.2003.12.002]
24. Rezaeizad, A., B. Wittkop, R. Snowdon, M. Hasan, V. Mohammadi, A. Zali and W. Friedt. 2011. Identification of QTLs for phenolic compounds in oilseed rape (Brassica napus L.) by association mapping using SSR markers. Euphytica, 177: 335-342. [DOI:10.1007/s10681-010-0231-y]
25. Saeed, A., R. Darvishzadeh and A. Basirnia. 2013. Simple sequence repeat markers associated with agro-morphological traits in chickpea (Cicer arietinum L.). Zemdirbyste-Agriculture, 100: 433-440. [DOI:10.13080/z-a.2013.100.055]
26. Shaaf, S., M.R. Bihamta, A.R. Taleai, V. Mohammadi and B. Kaliliyan. 2012. Association analysis of single nucleotide variation in flowering time genes PpdH1, HvCO1 and HvGI in the barley. Modern Genetics, 7: 179-191.
27. Shehzad, T., H. Iwata and K. Okuno. 2009. Genome-Wide association mapping of quantitative traits in sorghum (Sorghum bicolor (L.) Moench) by using multiple models. Breeding Science, 59: 217-227. [DOI:10.1270/jsbbs.59.217]
28. Thornsberry, J.M., M.M. Goodman, J. Doebley, S. Kresovich, D. Nielsen and E.S. Buckler. 2001. Dwarf8 polymorphisms associate with variation in flowering time. Nature Genetics, 28: 286-289. [DOI:10.1038/90135]
29. Xiao, B.G., Z.L. Xu, X.J. Chen, A.R. Shen, Y.P. Li and J. Zhu. 2006. Genetic linkage map constructed by using a HD population for the flue-cured tobacco. Acta Tabacaria Sinica, 12: 35-40.
30. Xu, W., P.K. Subudhi, O.R. Crasta, D.T. Rosenow, J.E. Mullet and H.T. Nguyen. 2000. Molecular mapping of QTLs conferring stay-green in grain sorghum (Sorghum bicolor L. Moench). Genome, 43: 461-469. [DOI:10.1139/g00-003]
31. Yan, J., T. Shan, M. Warburton, E. Buckler, M. Mcmullen and J. Crouch. 2009. Genetic characterization and linkage disequilibrium estimation of a global maize collection using SNP markers. Plos One, 4: e8451. [DOI:10.1371/journal.pone.0008451]
32. Yang, B.C., B.G. Xiao, X.J. Chen and C.H. Shi. 2007. Assessing the genetic diversity of tobacco germplasm using inter simple sequence repeat and inter-retrotransposon amplification polymorphism markers. Annuals of Applied Biology, 150: 393-401. [DOI:10.1111/j.1744-7348.2007.00139.x]
33. Yu, J., G. Pressoir, W.H. Briggs, B.I. Vroh and M. Yamasaki. 2006. A unified mixed-model method for association mapping that accounts for multiple levels of relatedness. Nature Genetics, 38: 203-208. [DOI:10.1038/ng1702]
34. Yu, X. and Y. Jiang. 2013. Association of candidate genes with drought tolerance traits in diverse perennial Ryegrass accessions. 2012 Annu. Rep. Purdue University, Turf grass Science, 1-6.
35. Zhang, Q., C. Wu, F. Ren, Y. Li and C. Zhang. 2012. Association analysis of important agronomical traits of maize inbred lines with SSRs. Australian Journal of Crop Science, 6: 1131-1138.
36. Zhao, J., M.J. Paulo, D. Jamer, P. Lou, F.V. Eeuwijk, G. Bonnema, D. Vreugdenhil and M. Koornneef. 2007. Association mapping of leaf traits, flowering time and phytate content in Brassica rapa. Genome, 50: 963-973. [DOI:10.1139/G07-078]
37. Zhu, C.M., E. Gore, S. Buckler and J. Yu. 2008. Status and prospects of association mapping in plants. The Plant Genome, 1: 5-20. [DOI:10.3835/plantgenome2008.02.0089]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
