دوره 8، شماره 18 - ( تابستان 1395 )
جلد 8 شماره 18 صفحات 118-112 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
(2016). Effect of Genotype, Stress Pre-Treatment and Culture Medium on plant Regeneration of Barley Microspores Via Anther Culture. J Crop Breed. 8(18), 112-118. doi:10.29252/jcb.8.18.112
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-646-fa.html
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-646-fa.html
شیخ‌رضایی سعیده، عنایتی شریعت‌پناهی مهران. بررسی اثر ژنوتیپ، پیش‌تیمارتنشی و محیطکشت در باززایی میکروسپورهای جو از طریق کشت بساک پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی 1395; 8 (18) :118-112 10.29252/jcb.8.18.112
چکیده: (4487 مشاهده)
تولید گیاهان دابلدهاپلوئید یکی از بهترین روشهای اصلاحی برای دستیابی به لاین خالص است. برای تولید گیاهان دابلدهاپلوئید در گیاه جو (Hordeum vulgare L.) روش کشت بساک از کارآمدترین روشها است. این پژوهش با هدف بررسی اثر ژنوتیپ، پیشتیمارهای تنشی و محیطکشت بر روی کالوسزایی و باززایی بساکهای جو انجام شد. بساکها از 6 ژنوتیپ جو شامل هیبریدهای F3 (21070 ، 21082، 21095، 21076، 21063 و رقم Igri) جداسازی شدند. بساکها در محیط کشت جامد FHG فاقد هورمون و دو نوع محیطکشت جامد FHG حاوی هورمونهای IAA (mgl-1 2) وBAP (mgl-1 1) یا 2.4-D (mgl-1 2) وKin (mgl-1 5/0) کشت داده شدند. اثر پیشتیمار سرمایی به تنهایی و همچنین اثر ترکیبی پیشتیمارهای گرسنگی و سرمایی بر میزان کالوسزایی و باززایی بساکها مورد بررسی قرار گرفتند. بر اساس نتایج حاصله بیشترین میزان کالوسزایی، گیاهچه سبز و آلبینو در ژنوتیپ Igri در محیطکشت پایه FHG حاوی IAA (mgl-1 2) و BAP (mgl-1 1) بهدست آمد. در سایر ژنوتیپهای پاسخده بیشترین گیاهچه سبز در ژنوتیپ 21082 با پیشتیمار سرمایی به مدت 28 روز در محیطکشت FHG حاوی هورمونهای 2.4-D (mgl-1 2) وKin (mgl-1 5/0) بهدست آمد. طبق نتایج بهدست آمده رقم Igri کاملاً پاسخده، هیبریدهای 21082 و 21076 کم پاسخده و سایر ژنوتیپها سخت پاسخده بودند.
فهرست منابع
1. Aionesei, T.E., A. Touraev and E. Heberle-Bors. 2005. Pathways to microspore embryogenesis. In: Palmer, C.E., W.A. Keller and K. J. Kasha (eds.) Biotechnology in Agriculture and Forestry, 56: 11-34., Springer Berlin Heidelberg. [DOI:10.1007/3-540-26889-8_2]
2. Asakaviciute, R. and I. Pasakinskiene. 2006. Androgenesis in another culture of Lithuanian spring barley cultivars. Biologija, 4: 37-40.
3. Asakaviciute, R. 2008. Androgenesis in another culture of Lithuanian spring barley (Hordeum vulgare L.) and potato (Solanum tuberosum L.) cultivars. Turkish Journal of Biology, 32: 155-160.
4. Castillo, A. M., M.P. Vallés and L. Cistué. 2000. Comparison of anther and isolated microspore cultures in barley. Effects of culture density and regeneration medium. Euphytica. 113: 1-8. [DOI:10.1023/A:1003937530907]
5. Chawla, H.S. 2002. Introduction to plant biotechnology. Science Publishers, Inc. UK.
6. Cistue, L., M. Soriano, A.M. Castillo, M.P. Valles, J.M. Sanz and B. Echavarri. 2006. Production of doubled haploids in durum wheat (Triticum turgidum L.) through isolated microspore culture, Plant Cell Reports, 25: 257-264. [DOI:10.1007/s00299-005-0047-8]
7. Gribaudo, I., G. Gambino and R. Vallania. 2004. Somatic embryogenesis from grapevine anthers: the optimal developmental stage for collecting explants. American Journal of Enology & Viticulture, 55: 427-430.
8. Hayes, P., A. Corey and J. DeNoma. 2003. Doubled haploid production in barley using the Hordeum bulbosum (L.) technique. In: Maluszynski, M., K.J. Kasha, B.P. Forster and I. Szarejko (eds.) Doubled haploid production in Crop Plants, 5-14 pp., A Manual. Kluwer, Dordrecht Boston London.
9. Hunter, C.P. 1988. Plant regeneration from microspores of barley (Hordeum vulgare). PhD Thesis, Ashford Kent University of, London, Wye College.
10. Hou, Y., A.G. Armin and X.W. Deng. 1993. A new class of Arabidopsis constitutive Photomorphogenic genes involved in regulating cotyledon development. Plant Cell, 5: 329-339. [DOI:10.1105/tpc.5.3.329]
11. Indrianto, A., E. Heberle-Bors and A. Touraev. 1999. Assessment of various stresses and carbohydrates for their effects on their induction of embryogenesis in isolated wheat microspors. Plant Science, 143: 71-79. [DOI:10.1016/S0168-9452(99)00022-9]
12. Jacquard, C., R. Asakaviciute, A.M. Hamalian, R.S. Sangwan, P. Devaux and C. Clement. 2006. Barley anther culture: effects of annual cycle and spike position on microspore embryogenesis and albinism. Plant Cell Reports, 25: 375-381. [DOI:10.1007/s00299-005-0070-9]
13. Kasha, K.J., E.Simion, R. Oro and Y.S. Shim. 2003. Barley isolated microspore culture protocol. In: Maluszynski. M., K.J. Kasha, B.P. Forster and I. Szarejko (eds.) Doubled haploid production in Crop Plants, A Manual, Dordrecht, 83-94 pp., The Netherlands: Kluwer Academic Publishers. [DOI:10.1007/978-94-017-1293-4_7]
14. Kasha, K.J., E. Simion, R. Oro, Q.A. Yao, T.C. Hu and A.R. Carlson. 2001. An improved in vitro technique for isolated microspore culture of barley. Euphytica, 120: 379-385. [DOI:10.1023/A:1017564100823]
15. Kondić-Špika, A.D., B.D. Kobiljski and N.S. Hristov. 2008. Efficiency of another culture technique in the production of wheat double haploids. Matica Srpska Journal for Natural Sciences, 115: 35-40. [DOI:10.2298/ZMSPN0815035K]
16. Kruczkowska, H., H. Pawlowska and B. Skucinska. 2002. Influence of anther pretreatment on the efficiency of androgenesis in barley. Journal of Applied Genetics, 43: 287-296.
17. Kumar, D. 1995. An Introduction to plant tissue culture. New central Book. Agency LTD, 185 pp.
18. Lazaridou, T., I. Sistanis, A. Lithourgidis, H. Ambrus and D. Roupakias. 2011. Response to in-vitro anther culture of F3 families originating from high and low yielding F2 barley (Hordeum vulgare L.) plants. Australian Journal of Crop Science, 5: 265 pp.
19. Lazaridou, T.B., A.S. Lithourgidis, S.T. Kotzamanidis and D.G. Roupakias. 2005. Anther culture response of barley genotypes to cold pretreatments and culture media. Russian Journal of Plant Physiology, 52: 696-699. [DOI:10.1007/s11183-005-0104-8]
20. Li, H. and P. Devaux. 2001. Enhancement of microspore culture efficiency of recalcitrant barley genotypes. Plant Cell Reports, 20: 475-481. [DOI:10.1007/s002990100368]
21. Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15: 473-497. [DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x]
22. Pierik, R.L.M. 1998. In vitro culture of higher plants, Department of Horticulture, Wageningen Agricultural University. The Netherland, 226: 25-40.
23. Pulido, A., A. Hernando, F. Bakos, M. Endez, M. Devic, B. Barnab and A. Olmedilla. 2006. Hordeins are expressed in microspore-derived embryos and also during male gametophytic and very early stages of seed development. Journal of Experimental Botany, 57: 2837-2846. [DOI:10.1093/jxb/erl042]
24. Rodriguez-Serrano, M., I. Barany, D. Prem, M.J. Coronado, J. C. Risueno and P.S. Testillano. 2011. NO, ROS, and cell death associated with caspase-like activity increase in stress-induced microspore embryogenesis of barley. Journal of Experimental Botany, 63: 2007-2024. [DOI:10.1093/jxb/err400]
25. Shariatpanahi, M.E., K. Belogradova, L. Hessamvaziri, E. Heberle-Bors and A. Touraev. 2006. Efficient embryogenesis and regeneration in freshly isolated and cultured wheat (Triticum aestivum L.) microspores without stress pretreatment. Plant Cell Reports, 25: 1294-1299. [DOI:10.1007/s00299-006-0205-7]
26. Shariatpanahi, M. E., A.M. Shakib and D.E. Meybodi. 2012. Haploid and its applications in genetics and plant breeding. ABRII Publication, Iran, 276 pp (In Persian).
27. Soriano, M., L. Cistué, M.P. Vallés and A.M. Castillo. 2007. Effects of colchicine on anther and microspore culture of bread wheat (Triticum aestivum L.). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 91: 225-234. [DOI:10.1007/s11240-007-9288-2]
28. Thomas, W.T.B., B.P. Forster and B. Gertsson. 2003. Doubled haploids in breeding. In Doubled Haploid Production. In: Crop Plants (pp: 337-349). Springer Netherlands. A manual. Dordrecht. 337-349 pp., The Netherlands: Kluwer Academic Publishers. [DOI:10.1007/978-94-017-1293-4_47]
29. Vergne, P., I. Delvallee and C. Dumas. 1987. Rapid assessment of microspore and pollen development stage in wheat and maize using DAPI and membrane permealization. Stain Technol, 62: 299-304. [DOI:10.3109/10520298709108014]
30. Zamani, L., E. GouliVavdinoudi, G. Kovacs, I. Xynias, D. Roupakias and B. Barnabas. 2003. Effect of parental genotypes and colchicine treatment on the androgenic response of wheat F3 hybrids. Plant Breeding, 122: 314-317. [DOI:10.1046/j.1439-0523.2003.00866.x]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
