دوره 17، شماره 4 - ( زمستان 1404 )                   جلد 17 شماره 4 صفحات 21-10 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Khalili E, Babaeizad V, Khosravi V, Tajik Ghanbari M A, Naimi S. (2025). The Effect of Potassium Phosphite on the Expression Patterns of Some Defense Response Genes in the Hashemi Rice Cultivar in Interaction with Pyricularia oryzae. J Crop Breed. 17(4), 10-21. doi:10.61882/jcb.2025.1579
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1579-fa.html
خلیلی الهام، بابایی زاد ولی اله، خسروی وحید، تاجیک قنبری محمد علی، نعیمی شهرام.(1404). بررسی تاثیر فسفیت پتاسیم بر الگوهای بیان برخی ژن‌های القایی در برنج رقم هاشمی در برابر قارچ Pyricularia oryzae پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی 17 (4) :21-10 10.61882/jcb.2025.1579

URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1579-fa.html


1- گروه گیاه ‎پزشکی، دانشکده علوم زراعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
2- بخش تحقیقات گیاه‎پزشکی، موسسه تحقیقات برنج کشور معاونت مازندران (آمل)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، آمل، ایران
3- گروه گیاه‎پزشکی، دانشکده علوم زراعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
4- بخش تحقیقات کنترل بیولوژیک، موسسه تحقیقات گیاه‎پزشکی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
چکیده:   (730 مشاهده)

چکیده مبسوط
مقدمه و هدف: برنج یکی از گیاهان زراعی راهبردی به ‎شمار می‌رود که نقش مهمی در تامین امنیت غذایی بیش از 50 درصد از جمعیت جهان به‌ویژه در آسیا ایفا می‌کند. بلاست با عامل Pyricularia oryzae یکی از مهم‎ترین بیماری‌های برنج، سالانه تهدیدی جدی را برای رشد این محصول ایجاد می‌کند. القای مقاومت در برنج از طریق عوامل زیستی و غیر زیستی از جمله فسفیت، به‌عنوان یکی از ابزار‌های مدیریتی ایمن و نوین، در سطح جهانی به‌عنوان جایگزینی‌ سازگار با محیط‎زیست مورد استفاده قرارگرفته است و این روش باعث فعال‌سازی مکانیسم دفاعی در گیاهان و افزایش توانایی آن در پاسخ به تهاجم بیمارگرها می‌شود. لذا در این پژوهش، تأثیر فسفیت پتاسیم بر تغییرات بیان چند ژن دفاعی شامل PAL، LOX، NPR1، PR1 و PR5 در سطح رونویسی، در پاسخ به مقاومت برنج رقم هاشمی در برابر عامل بیماری بلاست مورد ارزیابی قرار گرفت.
مواد و روش‌ها: این پژوهش در گلخانه به‌صورت اسپلیت‎پلات در زمان در قالب طرح کاملا تصادفی با سه تکرار انجام شد. رقم هاشمی به‌عنوان رقم بومی رایج منطقه و حساس به بیماری بلاست انتخاب گردید. پس از کاشت گیاهچه‌های همسان در گلدان‌ها، محلول‌پاشی فسفیت پتاسیم رقیق‎ شده با غلظت دو گرم در لیتر و محلول‌پاشی آب مقطر سترون به‌عنوان تیمار شاهد روی گیاهچه‌های برنج در مرحله چهار تا پنج برگی انجام شد. پس از دو روز، سوسپانسیون اسپور قارچ بیمارگر با غلظت 105×5 اسپور در هر میلی‌لیتر و به‎ همراه 0/50 درصد توئین ۲۰ برای مایه‌‌زنی تمام بوته‌ها مورد استفاده قرار گرفت. زمان نمونه‎‌برداری از بافت برگی گیاهچه‌های تیمارشده و شاهد به‌ترتیب در چهار زمان صفر (قبل از مایه زنی با قارچ)، 48، 96 و 144 ساعت بعد از مایه‌زنی بیمارگر انجام شد. شدت بیماری بلاست 10 روز بعد از مایه‌زنی ثبت گردید. به‎ منظور بررسی تغییرات بیان ژن‌های دفاعی، پس از استخراج RNA نمونه‌ها و ساخت cDNA، از روش Quantitative real- time PCR استفاده گردید و ژن Ubiquitin به‌عنوان ژن خانه‌دار در نظر گرفته ‎شد. تجزیه‌ آماری داده‌های به ‎دست‎آمده از این آزمایش و مقایسه میانگین داده‌ها به روش دانکن در سطح احتمال 0/10 درصد با نرم‌افزار SAS 9.1 و همچنین رسم نمودارها با نرم‌افزار Excel 2010 انجام گرفت.
یافته‌ها: نتایج تجزیه واریانس داده‌های شدت بیماری بلاست ناشی از اثر فسفیت پتاسیم در مرحله برگی روی رقم هاشمی نشان دادند که گیاهان تیمارشده در مقایسه با گیاهان شاهد، آلودگی بسیار معنی ‎دار کمتری نسبت به بیماری از خود نشان دادند. نتایج ارزیابی اثر تیمار فسفیت پتاسیم بر میزان تغییرات بیان ژن‌های NPR1، PR1، PR5، LOX و PAL در مقایسه با شاهد حاکی از آن بودند که داده‌ها اختلاف معنی‌‌داری با یکدیگر داشتند. مقایسه میانگین‌ها نشان داد که الگوهای بیان ژن NPR1، PR5 و LOX در همه زمان‌ها، پس از مایه‎ زنی بیمارگر در تیمار فسفیت پتاسیم، افزایش بیان داشت اما حداکثر بیان این ژن‌ها 48 ساعت پس از مایه‎ زنی بیمارگر مشاهده شد. میزان رونوشت ژن‌های NPR1، PR5 و LOX در تیمار فسفیت پتاسیم در ساعت 48 بعد از مایه‌زنی بیمارگر به‌ترتیب 7/08، 4/2 و 7/28 بود که نسبت به گیاهان شاهد در همان زمان به‌ترتیب 2/36، 2/83 و 5/83 برابر افزایش فعالیت داشتند. فعالیت ژن PR5 در 48 ساعت پس از مایه ‎زنی در هر دو تیمار فسفیت پتاسیم و شاهد با تفاوت معنی‌داری بیشترین مقدار بود، سپس بیان ژن در ساعت 96 کاهش و مجددا در ساعت 144 افزایش داشت اما میزان فعالیت ژن در تیمار شاهد با اختلاف معنی ‎دار کمتر از تیمار فسفیت پتاسیم بود. سطح بیان ژن PR1 در گیاهان تیمارشده با فسفیت پتاسیم و شاهد در زمان 48 ساعت پس از مایه ‎زنی به‌ترتیب با 1/65 و 1/4 برابر افزایش نسبت به زمان صفر بیشترین مقدار را نشان داد. در الگوی بیان ژن PR1 در گیاهان شاهد و گیاهان تیمارشده با فسفیت پتاسیم در ساعت 48 بعد از مایه ‎زنی بیمارگر افزایش و در بقیه ساعات نسبت به زمان صفر کاهش مشاهده شد. با وجود این، میزان بیان ژن در تیمار فسفیت پتاسیم در همه‌ی زمان‌ها بیشتر از شاهد بود. اثر تیمار فسفیت پتاسیم بر افزایش میزان بیان ژن PAL معنی‌دار بود. میزان فعالیت ژن PAL در تیمار فسفیت پتاسیم، در ساعات 48، 96 و 144 به‌ترتیب 0/58، 2/65 و 0/41 برابر در مقایسه با زمان صفر ارزیابی شد و بیشترین سطح فعالیت این ژن در ساعت 96 پس از مایه ‎زنی بیمارگر بود. اما در تیمار شاهد افزایش سطح بیان ژن PAL در ساعت 48 پس از مایه ‎زنی بیمارگر مشاهده شد.
نتیجه‌گیری: نتایج این مطالعه نقش مؤثر فسفیت پتاسیم در افزایش بیان برخی ژن‌های دفاعی در گیاه برنج و در نتیجه القا مقاومت و حفاظت گیاه در برابر قارچ p. oryzae را نشان می ‎دهند که از گسترش بیماری بلاست برنج جلوگیری می‌کند. بنا بر این، استفاده از فسفیت پتاسیم به‌عنوان محرک ‌مقاومت می‌تواند به تقویت دفاع گیاه در برابر حملات بعدی عوامل بیماری‌زا کمک کند.

 

متن کامل [PDF 1457 kb]   (17 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: بيوتكنولوژي گياهي
دریافت: 1403/11/10 | پذیرش: 1404/4/4

فهرست منابع
1. Achary, V. M. M., Ram, B., Manna, M., Datta, D., Bhatt, A., Reddy, M. K., & Agrawal, P. K. (2017). Phosphite: a novel P fertilizer for weed management and pathogen control. Plant Biotechnology Journal, 15(12), 1493-1508. [DOI:10.1111/pbi.12803]
2. Akbudak, M. A., Yildiz, S., & Filiz, E. (2020). Pathogenesis related protein-1 (PR-1) genes in tomato (Solanum lycopersicum L.): Bioinformatics analyses and expression profiles in response to drought stress. Genomics, 112(6), 4089-4099. [DOI:10.1016/j.ygeno.2020.07.004]
3. Alon, M., Malka, O., Eakteiman, G., Elbaz, M., Moyal Ben Zvi, M., Vainstein, A., & Morin, S. (2013). Activation of the Phenylpropanoid pathway in Nicotiana tabacum improves the performance of the whitefly Bemisia tabaci via reduced jasmonate signaling. PloS One, 8(10), e76619. [DOI:10.1371/journal.pone.0076619]
4. Center for Statistics, Information and Communication Technology. (2023). Agricultural Statistics. Ministry of Agricultural Jihad. 103.
5. da Cruz, M. F. A., Diniz, A. P. C., Rodrigues, F. A. & de Barros, E. G. (2011). Foliar application of products on the reduction of blast severity on wheat. Tropical Plant Pathology, 36(6), 424-428. [DOI:10.1590/S1982-56762011000600014]
6. Datta, K., Velazhahan, R., Oliva, N., Ona, I., Mew, T., Khush, G. S., Muthukrishnan, S. & Datta, S. K. (1999). Over-expression of the cloned rice thaumatin-like protein (PR-5) gene in transgenic rice plants enhances environmental friendly resistance to Rhizoctonia solani causing sheath blight disease. Theoretical and Applied Genetics, 98, 1138-1145. [DOI:10.1007/s001220051178]
7. de Fátima Pereira Silva, P., de Resende, M. L. V., Reichel, T., de Lima Santos, M., Dos Santos Botelho, D. M., Ferreira, E. B., & Freitas, N. C. (2023). Potassium Phosphite Activates Components Associated with Constitutive Defense Responses in Coffea arabica Cultivars. Molecular Biotechnology, 65(11), 1777-1795. [DOI:10.1007/s12033-023-00683-5]
8. Drakhshan, A., Salari, M., babaeizad, V., Radman, N. & Taheri, A. (2023). Involvement of NPR1 and Some Pathogenesis-Related Genes in Challenging with Bacterial Rice Blight caused by Xanthomonas Oryzae pv. Oryzae. Journal of Crop Breeding, 15(45), 115-124. dorl: 20.1001.1.22286128.1401.15.45.10.2 [In Persian] [DOI:10.61186/jcb.15.45.115]
9. Duan, L., Liu, H., Li, X., Xiao, J., & Wang, S. (2014). Multiple phytohormones and phytoalexins are involved in disease resistance to Magnaporthe oryzae invaded from roots in rice. Physiologia Plantarum, 152(3), 486-500. [DOI:10.1111/ppl.12192]
10. El-kereamy, A., El-sharkawy, I., Ramamoorthy, R., Taheri, A., Errampalli, D., Kumar, P., & Jayasankar, S. (2011). Prunus domestica pathogenesis-related protein-5 activates the defense response pathway and enhances the resistance to fungal infection. PloS One, 6(3), e17973. [DOI:10.1371/journal.pone.0017973]
11. FAO. (2023). Statics division 2023. http://www.fao.org/faostats/en/data
12. Fu, Y., Duan, X., Tang, C., Li, X., Voegele, R. T., Wang, X., Wei, G., & Kang, Z. (2014). TaADF7, an actin-depolymerizing factor, contributes to wheat resistance against Puccinia striiformis f. sp. tritici. The Plant Journal: for Cell and Molecular Biology, 78(1), 16-30. [DOI:10.1111/tpj.12457]
13. Gaikwad, A. P., & Balgude, Y. S. (2016). Induction of systemic resistance in rice against blast disease by bioagents and chemical. Journal of Rice Research, 9(2), 63-66.
14. Gamir, J., Darwiche, R., Van't Hof, P., Choudhary, V., Stumpe, M., Schneiter, R., & Mauch, F. (2017). The sterol-binding activity of Pathogenesis-Related Protein 1 reveals the mode of action of an antimicrobial protein. The Plant Journal: for Cell and Molecular Biology, 89(3), 502-509. [DOI:10.1111/tpj.13398]
15. Gao, P., Li, M., Wang, X., Xu, Z., Wu, K., Sun, Q., Du, H., Younas, M. U., Zhang, Y., Feng, Z., Hu, K., Chen, Z., & Zuo, S. (2023). Identification of Elite R-Gene Combinations against Blast Disease in Geng Rice Varieties. International Journal of Molecular Sciences, 24(4), 3984. [DOI:10.3390/ijms24043984]
16. Habibi Daronkolaei, M., Babaeizad, V., Tajick Ghanbari, M. A., Rahimian, H. & Dehestani, A. (2023). The Effect of Potassium Phosphite in the Induction of Some Rice Resistance Genes in Following the Sheet Blight Disease Agent Rhizoctinia Solani. Journal of Crop Breeding, 15(46), 62-72. dorl: 20.1001.1.22286128.1402.15.46.7.5 [In Persian] [DOI:10.61186/jcb.15.46.62]
17. Han, Z., Xiong, D., Schneiter, R., & Tian, C. (2023). The function of plant PR1 and other members of the CAP protein superfamily in plant-pathogen interactions. Molecular Plant Pathology, 24(6), 651-668. [DOI:10.1111/mpp.13320]
18. Hao, Z., Wang, L., Huang, F., & Tao, R. (2012). Expression of defense genes and antioxidant defense responses in rice resistance to neck blast at the preliminary heading stage and full heading stage. Plant Physiology and Biochemistry : PPB, 57, 222-230. [DOI:10.1016/j.plaphy.2012.05.009]
19. Hou, M., Xu, W., Bai, H., Liu, Y., Li, L., Liu, L., Liu, B., & Liu, G. (2012). Characteristic expression of rice pathogenesis-related proteins in rice leaves during interactions with Xanthomonas oryzae pv. oryzae. Plant Cell Reports, 31(5), 895-904. [DOI:10.1007/s00299-011-1210-z]
20. IRRI. (2013). Standard Evaluation System for Rice. International Rice Research Institute, P.O. Box 933, 1099 Manila, Philippines.
21. Jun, S. Y., Sattler, S. A., Cortez, G. S., Vermerris, W., Sattler, S. E., & Kang, C. (2018). Biochemical and Structural Analysis of Substrate Specificity of a Phenylalanine Ammonia-Lyase. Plant Physiology, 176(2), 1452-1468. [DOI:10.1104/pp.17.01608]
22. Khosravi, V. (2006). Identification of new races of Magnaporthe grisea, the causal agent of rice blast disease in Mazandaran. Final Report of Research Project. Iranian Rice Research Institute Publication.
23. Kim, S., Ahn, I. P., Park, C. H., Park, S. G., Park, S. Y., Jwa, N. S., & Lee, Y. H. (2001). Molecular characterization of the cDNA encoding an acidic isoform of PR-1 protein in rice. Molecules and Cells, 11(1), 115-121. [DOI:10.1016/S1016-8478(23)17013-0]
24. Lahari, Z., van Boerdonk, S., Omoboye, O. O., Reichelt, M., Höfte, M., Gershenzon, J., Gheysen, G., & Ullah, C. (2024). Strigolactone deficiency induces jasmonate, sugar and flavonoid phytoalexin accumulation enhancing rice defense against the blast fungus Pyricularia oryzae. The New Phytologist, 241(2), 827-844. [DOI:10.1111/nph.19354]
25. Li, Z., Wei, X., Tong, X., Zhao, J., Liu, X., Wang, H., Tang, L., Shu, Y., Li, G., Wang, Y., Ying, J., Jiao, G., Hu, H., Hu, P., & Zhang, J. (2022). The OsNAC23-Tre6P-SnRK1a feed-forward loop regulates sugar homeostasis and grain yield in rice. Molecular plant, 15(4), 706-722. [DOI:10.1016/j.molp.2022.01.016]
26. Liu, D., Raghothama, K. G., Hasegawa, P. M., & Bressan, R. A. (1994). Osmotin overexpression in potato delays development of disease symptoms. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 91(5), 1888-1892. [DOI:10.1073/pnas.91.5.1888]
27. Liu, J., Lefevere, H., Coussement, L., Delaere, I., De Meyer, T., Demeestere, K., Höfte, M., Gershenzon, J., Ullah, C., & Gheysen, G. (2024). The phenylalanine ammonia-lyase inhibitor AIP induces rice defence against the root-knot nematode Meloidogyne graminicola. Molecular Plant Pathology, 25(1), e13424. [DOI:10.1111/mpp.13424]
28. Livak, K. J., & Schmittgen, T. D. (2001). Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method. Methods (San Diego, Calif.), 25(4), 402-408. [DOI:10.1006/meth.2001.1262]
29. Mackill, D. J., & Bonman, J. M. (1992). Inheritance of blast resistance in nearisogenic lines of rice. Phytopathology, 82, 746-749. [DOI:10.1094/Phyto-82-746]
30. Mehta, S., Kumar, A., Achary, V. M. M., Ganesan, P., Patel, A., Singh, A., Rathi, N., Das, T. K., Lal, S. K., & Reddy, M. K. (2022). Antifungal and defense elicitor activity of Potassium phosphite against fungal blast disease on ptxD-OE transgenic indica rice and its acceptor parent. Pesticide Biochemistry and Physiology, 182, 105026. [DOI:10.1016/j.pestbp.2021.105026]
31. Mitsuhara, I., Iwai, T., Seo, S., Yanagawa, Y., Kawahigasi, H., Hirose, S., Ohkawa, Y., & Ohashi, Y. (2008). Characteristic expression of twelve rice PR1 family genes in response to pathogen infection, wounding, and defense-related signal compounds (121/180). Molecular Genetics and Genomics: MGG, 279(4), 415-427. [DOI:10.1007/s00438-008-0322-9]
32. Mohammadi, M. A., Zhang, Z., Xi, Y., Han, H., Lan, F., Zhang, B., & Wang-Pruski, G. (2019). Effects of potassium phosphite on biochemical contents and enzymatic activities of Chinese potatoes inoculated by Phytophthora Infestans. Applied Ecology and Environmental Research, 17(2), 4499-4514. [DOI:10.15666/aeer/1702_44994514]
33. Montero, A., & Badr, K. F. (2000). 15-Lipoxygenase in glomerular inflammation. Experimental Nephrology, 8(1), 14-19. [DOI:10.1159/000020643]
34. Musa Nejad, S., Momeni, A., & Javan Nikkhah, M. (2013). Study and investigation of blast resistance compounds in Iranian rice cultivars. Plant Diseases, 4, 23-36. [In Persian]
35. Nazari, S., Alaei, H., Babaeizad, V., & Momeni, A. (2021). Investigation of pathogenesis-related genes expression in rice symbiont with Trichoderma harzianum after inoculation with Magnaporthe oryzae fungus. Agricultural Biotechnology Journal, 13(3), 107-130. [DOI:10.22092/BCPP.2021.125077 [In Persian]]
36. Petre, B., Major, I., Rouhier, N., & Duplessis, S. (2011). Genome-wide analysis of eukaryote thaumatin-like proteins (TLPs) with an emphasis on poplar. BMC Plant Biology, 11, 33. [DOI:10.1186/1471-2229-11-33]
37. Rakwal, R., Agrawal, G. K., & Yonekura, M. (1999). Separation of proteins from stressed rice (Oryza sativa L.) leaf tissues by two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis: induction of pathogenesis-related and cellular protectant proteins by jasmonic acid, UV irradiation and copper chloride. Electrophoresis, 20(17), 3472-3478. https://doi.org/10.1002/(SICI)1522-2683(19991101)20:17<3472::AID-ELPS3472>3.0.CO;2-0 https://doi.org/10.1002/(SICI)1522-2683(19991101)20:17<3472::AID-ELPS3472>3.3.CO;2-S [DOI:10.1002/(SICI)1522-2683(19991101)20:173.0.CO;2-0]
38. Ribot, C., Hirsch, J., Balzergue, S., Tharreau, D., Nottéghem, J. L., Lebrun, M. H., & Morel, J. B. (2008). Susceptibility of rice to the blast fungus, Magnaporthe grisea. Journal of Plant Physiology, 165(1), 114-124. [DOI:10.1016/j.jplph.2007.06.013]
39. Rostami, M., Tarighi, S., Taheri, P., & Rahimian, H. (2018). Study of lipoxygenase and phenylalanine ammonia-lyase gene expression and activity of related enzymes in rice under stress of Rhizoctonia solani, the causal agent of sheath blight disease, antagonistic and inducer bacteria in combination with potassium silicate. BioControl in Plant Protection, 6(1), 59-76. [DOI:10.22092/bcpp.2018.119377 [In Persian]]
40. Sharan, M., Taguchi, G., Gonda, K., Jouke, T., Shimosaka, M., Hayashida, N., & Okazaki, M. (1998). Effects of methyl jasmonate and elicitor on the activation of phenylalanine ammonia-lyase and the accumulation of scopoletin and scopolin in tobacco cell cultures. Plant Science, 132, 13-19. [DOI:10.1016/S0168-9452(97)00260-4]
41. Shasmita, Swain, B. B., Mishra, S., Mohapatra, P. K., Naik, S. K., & Mukherjee, A. K. (2023). Chemopriming for induction of disease resistance against pathogens in rice. Plant Science: an International Journal of Experimental Plant Biology, 334, 111769. [DOI:10.1016/j.plantsci.2023.111769]
42. Umate P. (2011). Genome-wide analysis of lipoxygenase gene family in Arabidopsis and rice. Plant Signaling & Behavior, 6(3), 335-338. [DOI:10.4161/psb.6.3.13546]
43. van Loon, L. C., Bakker, P. A., & Pieterse, C. M. (1998). Systemic resistance induced by rhizosphere bacteria. Annual Review of Phytopathology, 36, 453-483. [DOI:10.1146/annurev.phyto.36.1.453]
44. Van Loon, L. C., Pierpoint, W. S., Boller, T. & Conejero, V. (1994). Recommendations for naming plant pathogenesis-related proteins. Plant Molecular Biology Reporter, 12, 245-264. [DOI:10.1007/BF02668748]
45. Wasternack, C., & Strnad, M. (2019). Jasmonates are signals in the biosynthesis of secondary metabolites - Pathways, transcription factors and applied aspects - A brief review. New Biotechnology, 48, 1-11. [DOI:10.1016/j.nbt.2017.09.007]
46. Younas, M. U., Ahmad, I., Qasim, M., Ijaz, Z., Rajput, N., Parveen Memon, S., UL Zaman, W., Jiang, X., Zhang, Y. & Zuo, S. (2024). Progress in the Management of Rice Blast Disease: The Role of Avirulence and Resistance Genes through Gene-for-Gene Interactions. Agronomy, 14(1), 163. [DOI:10.3390/agronomy14010163]
47. Xu, R., Zhou, J., Zheng, E., Yang, Y., Li, D., Chen, Y., & Wang, X. (2021). Systemic acquired resistance plays a major role in bacterial blight resistance in a progeny of somatic hybrids of cultivated rice (Oryza sativa L.) and wild rice (Oryza meyeriana L.). Journal of Plant Diseases and Protection, 128(4), 1023-1040. [DOI:10.1007/s41348-021-00457-8]
48. Yuan, M., Ngou, B. P. M., Ding, P., & Xin, X. F. (2021). PTI-ETI crosstalk: an integrative view of plant immunity. Current Opinion in Plant Biology, 62, 102030. [DOI:10.1016/j.pbi.2021.102030]
49. Yun, D. J., Ibeas, J. I., Lee, H., Coca, M. A., Narasimhan, M. L., Uesono, Y., Hasegawa, P. M., Pardo, J. M., & Bressan, R. A. (1998). Osmotin, a plant antifungal protein, subverts signal transduction to enhance fungal cell susceptibility. Molecular Cell, 1(6), 807-817. https://doi.org/10.1016/S1097-2765(00)80080-5 [DOI:10.1016/s1097-2765(00)80080-5]
50. Zavaliev, R., & Dong, X. (2024). NPR1, a key immune regulator for plant survival under biotic and abiotic stresses. Molecular Cell, 84(1), 131-141. [DOI:10.1016/j.molcel.2023.11.018]
51. Zaynab, M., Fatima, M., Abbas, S., Sharif, Y., Umair, M., Zafar, M. H., & Bahadar, K. (2018). Role of secondary metabolites in plant defense against pathogens. Microbial Pathogenesis, 124, 198-202. [DOI:10.1016/j.micpath.2018.08.034]
52. Zeng, J., Ye, Z., He, X., & Zhang, G. (2019). Identification of microRNAs and their targets responding to low-potassium stress in two barley genotypes differing in low-K tolerance. Journal of Plant Physiology, 234-235, 44-53. [DOI:10.1016/j.jplph.2019.01.011]
53. Zhang, J., Ng, C., Jiang, Y., Wang, X., Wang, S., & Wang, S. (2022). Genome-wide identification and analysis of LOX genes in soybean cultivar "Zhonghuang 13". Frontiers in Genetics, 13, 1020554. [DOI:10.3389/fgene.2022.1020554]
54. Zhou, P., Zavaliev, R., Xiang, Y., & Dong, X. (2023). Seeing is believing: Understanding functions of NPR1 and its paralogs in plant immunity through cellular and structural analyses. Current Opinion in Plant Biology, 73, 102352. [DOI:10.1016/j.pbi.2023.102352]
55. Zhou, X., Liao, H., Chern, M., Yin, J., Chen, Y., Wang, J., Zhu, X., Chen, Z., Yuan, C., Zhao, W., Wang, J., Li, W., He, M., Ma, B., Wang, J., Qin, P., Chen, W., Wang, Y., Liu, J., Qian, Y., … Chen, X. (2018). Loss of function of a rice TPR-domain RNA-binding protein confers broad-spectrum disease resistance. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 115(12), 3174-3179. [DOI:10.1073/pnas.1705927115]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی: یکتاوب افزار شرق

© 2026 CC BY-NC 4.0 | Journal of Crop Breeding

Designed & Developed by: Yektaweb