دوره 13، شماره 40 - ( زمستان 1400 1400 )
جلد 13 شماره 40 صفحات 206-192 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
limouchi K, Siadat A. (2021). Investigating the Effect of Different Planting Methods and Different Levels of Hormone Distribution on Vascular Tissue of Flag Leaf in Rice Genotypes under Salinity Stress in Northern Khuzestan. jcb. 13(40), 192-206. doi:10.52547/jcb.13.40.192
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1164-fa.html
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1164-fa.html
لیموچی کاوه، سیادت عطاالله. بررسی اثر روش های مختلف کاشت و سطوح مختلف توزیع هورمون ها بر بافت های آوندی برگ پرچم ژنوتیپ های برنج تحت تنش شوری در شمال خوزستان پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی 1400; 13 (40) :206-192 10.52547/jcb.13.40.192
گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ایران.
چکیده: (1917 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه و هدف: برنج به عنوان یکی از مهمترین محصولات زراعی دنیا، در بخشهای وسیعی از سراسر جهان کشت می شود و غذای اصلی بیش از نیمی از مردم جهان است (32). خصوصیات آناتومیکی روی رفتارهای اکولوژیک، نیازهای محیطی و سازگاری گیاهان با شرایط پیرامون تأثیر چشمگیری دارند. استفاده از ویژگی های آناتومیک گیاهان در تاکسونومی به حدود یک قرن پیش بر میگردد (Gilani et al., 2017). تغییرات محیطی مانند شوری که منجر به کاهش میزان آب ورودی به گیاه می شود سبب کاهش سطح دستجات آوندی مانند آوند چوبی به عنوان یک سازوکار دفاعی جهت حفظ پتانسیل آبی گیاه می شود (18). هدف دستیابی به یک حد مطلوبی از تولید با توجه به تغییر صفات آناتومی تحت تأثیر تیمارهای ژنوتیپ، روش کشت و هورمون و اثرات متقابل بین آنها در گیاه برنج تحت شرایط تنش شوری می باشد.
مواد و روش‌ها: این پژوهش با هدف تعیین بهترین روش کشت و تیمار هورمونی در مواجهه با شرایط شوری پیرامون گیاه برنج به صورت کرت های دو بار خردشده در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در استان خوزستان در دو سال (1397 و 1398) انجام شد. سه شیوه کاشت (خشکه‌کاری، نشایی و مستقیم یا رایج منطقه)، 16 تیمار هورمونی که شامل، شاهد، پرایمینگ با IAA، پرایمینگ با SA، پرایمینگ با SA+IAA، 1 لیتر IAA در مرحله پنجه زنی، 2 لیتر IAA در مرحله پنجه زنی، 1 لیتر SA در مرحله پنجه زنی، 2 لیتر SA در مرحله پنجه زنی، 2 لیتر SA+IAA در مرحله پنجهزنی، 4 لیتر SA+IAA در مرحله پنجه زنی، 1 لیتر IAA در مرحله ظهور خوشه، 2 لیتر IAA در مرحله ظهور خوشه، 1 لیتر SA در مرحله ظهور خوشه، 2 لیتر SA در مرحله ظهور خوشه، 2 لیتر SA+IAA در مرحله ظهور خوشه و 4 لیتر SA+IAA در مرحله ظهور خوشه بودند بر روی ژنوتیپهای مختلف برنج (بر روی صفات ریخت شناسی سطح و تعداد دستجات آوندی چوب، آبکش و کانال هوایی) مورد بررسی قرار گرفتند.
یافته‌ها: نتایج تجزیه واریانس مرکب نشان داد که بین اثرات اصلی و متقابل صفات تفاوت معنی داری در سطح احتمال یک درصد وجود داشت. بیشترین سطح کانال هوایی با متوسط 142/290 میکرومتر مربع در شرایط روش کشت مستقیم با تیمار هورمونی چهار لیتر اکسین و سالسیلیک اسید به صورت تلفیقی در هکتار با غلظت 20 میلی گرم در لیتر، در مرحله ظهور خوشه و رقم N22 بدست آمد که می تواند با افزایش هدرروی انرژی تنفسی تأثیر منفی بر رشد رویشی و زایشی گیاه داشته باشد. بیشترین سطح دستجات آوند آبکش و چوب نیز در شرایط کاشت نشایی و پرایمینگ با اکسین و سالسیلیک اسید به ترتیب با متوسط 432/1630 و 906/1061 میکرومتر مربع در ژنوتیپ های عنبوری قرمز و N22 بدست آمد که می تواند با افزایش سطح انتقال آب و مواد غذایی تأثیر مثبتی بر افزایش رشد رویشی و زایشی گیاه برنج داشته باشند.
نتیجه‌گیری: با توجه به تیمارهای هورمونی و روش های کشت اعمال شده در شرایط شوری پیرامون گیاه برنج، شاهد واکنش های مختلف ژنوتیپ های مورد بررسی در تحمل به این شرایط بودیم که این واکنش ها می تواند در تحقیقات به نژادی و اصلاح ارقام به عنوان یکی از اهداف اصلی مورد بررسی قرار گیرد.
مقدمه و هدف: برنج به عنوان یکی از مهمترین محصولات زراعی دنیا، در بخشهای وسیعی از سراسر جهان کشت می شود و غذای اصلی بیش از نیمی از مردم جهان است (32). خصوصیات آناتومیکی روی رفتارهای اکولوژیک، نیازهای محیطی و سازگاری گیاهان با شرایط پیرامون تأثیر چشمگیری دارند. استفاده از ویژگی های آناتومیک گیاهان در تاکسونومی به حدود یک قرن پیش بر میگردد (Gilani et al., 2017). تغییرات محیطی مانند شوری که منجر به کاهش میزان آب ورودی به گیاه می شود سبب کاهش سطح دستجات آوندی مانند آوند چوبی به عنوان یک سازوکار دفاعی جهت حفظ پتانسیل آبی گیاه می شود (18). هدف دستیابی به یک حد مطلوبی از تولید با توجه به تغییر صفات آناتومی تحت تأثیر تیمارهای ژنوتیپ، روش کشت و هورمون و اثرات متقابل بین آنها در گیاه برنج تحت شرایط تنش شوری می باشد.
مواد و روش‌ها: این پژوهش با هدف تعیین بهترین روش کشت و تیمار هورمونی در مواجهه با شرایط شوری پیرامون گیاه برنج به صورت کرت های دو بار خردشده در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در استان خوزستان در دو سال (1397 و 1398) انجام شد. سه شیوه کاشت (خشکه‌کاری، نشایی و مستقیم یا رایج منطقه)، 16 تیمار هورمونی که شامل، شاهد، پرایمینگ با IAA، پرایمینگ با SA، پرایمینگ با SA+IAA، 1 لیتر IAA در مرحله پنجه زنی، 2 لیتر IAA در مرحله پنجه زنی، 1 لیتر SA در مرحله پنجه زنی، 2 لیتر SA در مرحله پنجه زنی، 2 لیتر SA+IAA در مرحله پنجهزنی، 4 لیتر SA+IAA در مرحله پنجه زنی، 1 لیتر IAA در مرحله ظهور خوشه، 2 لیتر IAA در مرحله ظهور خوشه، 1 لیتر SA در مرحله ظهور خوشه، 2 لیتر SA در مرحله ظهور خوشه، 2 لیتر SA+IAA در مرحله ظهور خوشه و 4 لیتر SA+IAA در مرحله ظهور خوشه بودند بر روی ژنوتیپهای مختلف برنج (بر روی صفات ریخت شناسی سطح و تعداد دستجات آوندی چوب، آبکش و کانال هوایی) مورد بررسی قرار گرفتند.
یافته‌ها: نتایج تجزیه واریانس مرکب نشان داد که بین اثرات اصلی و متقابل صفات تفاوت معنی داری در سطح احتمال یک درصد وجود داشت. بیشترین سطح کانال هوایی با متوسط 142/290 میکرومتر مربع در شرایط روش کشت مستقیم با تیمار هورمونی چهار لیتر اکسین و سالسیلیک اسید به صورت تلفیقی در هکتار با غلظت 20 میلی گرم در لیتر، در مرحله ظهور خوشه و رقم N22 بدست آمد که می تواند با افزایش هدرروی انرژی تنفسی تأثیر منفی بر رشد رویشی و زایشی گیاه داشته باشد. بیشترین سطح دستجات آوند آبکش و چوب نیز در شرایط کاشت نشایی و پرایمینگ با اکسین و سالسیلیک اسید به ترتیب با متوسط 432/1630 و 906/1061 میکرومتر مربع در ژنوتیپ های عنبوری قرمز و N22 بدست آمد که می تواند با افزایش سطح انتقال آب و مواد غذایی تأثیر مثبتی بر افزایش رشد رویشی و زایشی گیاه برنج داشته باشند.
نتیجه‌گیری: با توجه به تیمارهای هورمونی و روش های کشت اعمال شده در شرایط شوری پیرامون گیاه برنج، شاهد واکنش های مختلف ژنوتیپ های مورد بررسی در تحمل به این شرایط بودیم که این واکنش ها می تواند در تحقیقات به نژادی و اصلاح ارقام به عنوان یکی از اهداف اصلی مورد بررسی قرار گیرد.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
اصلاح براي تنش هاي زنده و غيرزنده محيطي
دریافت: 1399/6/6 | ویرایش نهایی: 1400/10/26 | پذیرش: 1400/6/30 | انتشار: 1400/10/26
دریافت: 1399/6/6 | ویرایش نهایی: 1400/10/26 | پذیرش: 1400/6/30 | انتشار: 1400/10/26
فهرست منابع
1. Ahmad, I., S. Maqsood, A. Basra and A. Wahid. 2014. Exogenous application of ascorbic acid, salicylic acid and hydrogen peroxide improves the productivity of hybrid maize at low temperature stress. International Journal of Agriculture and Biology, 16: 825-830.
2. Anon, S., J.A. Fernadez, A. Torrecillas, J.J. Alaroon and M.J. Sanchez-Bloanco. 2004. Effects of water stress and night temperature precondition on water relations and morphological and anatomical changes of lotus creticus plants. International Journal of Sciences Hortical, 101: 333-342. [DOI:10.1016/j.scienta.2003.11.007]
3. Anosheh, P., Y. Emam, M. Ashraf and RN. Foolad. 2012. Exogenous application in salicylic acid and alleviation chloramquat chloride negative effects. Adv. Studies in Biolog, 4(11): 501-520.
4. Askari, H., S.K, Kazemitabar, H. Najafi Zarrini and M.H, Saberi. 2021. Multivariate Assessment of Salt Tolerance (NaCl) in Barley (Hordeum Volgar L.) Genotypes. Journal of Crop Breeding, 36: 1-8 (In Persian).
5. Babu, R.C., H.E. Shashidhar, J.M. Lilley and N.D. Thanh. 2001. Variation in root penetration ability, osmotic adjustment and dehydration tolerance among accessions of rice adapted to rain fed lowland and upland ecosystem. Plant Breed, 120: 233-238. [DOI:10.1046/j.1439-0523.2001.00578.x]
6. Baruch, Z and T. Merida. 1995. Effects of drought and flooding on root anatomy in four tropical forage grasses. International Journal of Plant Sciences, 156(4): 514-521. [DOI:10.1086/297274]
7. Beyzavi, F., A. Baghzadeh, S. Mirzaei, M. Maleki and H. Mozafari. 2021. Investigation of some Biochemical Traits of Tolerant and Sensitive Wheat Cultivars (Triticum Bioticum) under Salinity Stress. Journal of Crop Breeding, 36: 216-234 (In Persian).
8. Biswambhar, S. 1965. Vascular morphology of the inflorescence of rice plant (oryza sativa. L.). Jute Agriculture Research Institute, 5: 202-218.
9. Claudio, L and S, Andrea. 1998. Effects of water stress on vessel size and xylem hydraulic conductivity in Vitis vinifera L. Journal of Experimental Botany. 49(321): 693-700. [DOI:10.1093/jexbot/49.321.693]
10. Cleland, R.E. 1987. Auxin and cell elongation. In: P. J. Davies (ed). Plant hormones and their role in plant growth and development. Kluwer. Dordrecht, The Netherlands. PP: 132-148. [DOI:10.1007/978-94-009-3585-3_8]
11. Darussalam Cole, M.A. and J.W. Patrick. 1998. Auxin control of photoassimilate transport to and within developing grains of wheat. Australian Journal of Plant Physiology, 25: 69-77. [DOI:10.1071/PP97080]
12. Davies, P.J. 1995. Plant Hormones. The Netherlands: Kluwer Academic Publishers, 230 p.
13. Dawood, M.G. 2016. Influence of osmoregulators on plant tolerance to water stress. Scientia Agriculturae, 13(1): 42-58. [DOI:10.15192/PSCP.SA.2016.13.1.4258]
14. De data, S.K. 1982. Crop establishment technologies and cultural practices for upland rice. Paper presented at the upland rice workshop, 19 pp.
15. Dunlap, J.R and M.L. Binzel. 1996. NaCl reduces Indol-3- acetic acid levels in the roots of tomato plants independent of stress-induced abscise acid. Plant Physiol, 112: 379-384. [DOI:10.1104/pp.112.1.379]
16. Eisvand, H.R., R. Tavakkol-Afshari. F. Sharifzadeh. H. Madah Arefi and S.M. Hesamzadeh Hejazi. 2008. Improvement of physiological quality of deteriorated tall wheat grass (Agropyron elongatum Host) seeds by hormonal priming for control and drought stress conditions. Iranian Journal of Field Crop Science, 1(39): 53-65 (In Persian).
17. Emanuel, M.E. and C.W. Wilson. 1982. Identification of a Casparian band in the hypodermis of onion and corn roots. Canadian Journal of Botany, 60: 1529-1535. [DOI:10.1139/b82-195]
18. Ghorbani, A., F. Zarinkamar and A. Fallah. 2011. Effect of cold stress on anatomical and morphological traits in both resistant and susceptible rice varieties at germination stage. Journal of cells and tissues, 2(3): 235-244.
19. Ghosh, B. and N. Chakma. 2015. Impacts of rice intensification system on two C.D. blocks of Barddhaman district. West Bengal of Current Science, 109(2): 342-346.
20. Han, X.B., R.Q. Li and J.B. Wang. 1997. Celluar structural comparison between different themo resistant cultivars of Raphanus sativus l. under heat strass Jwuhan. Botanical Research Journal, 15: 173-178 (In Chinese with English abstract).
21. Hiroyuki, S.H., T. Hasegava, S.H. Fujimura, K. Iwama. 2004. Responses of leaf photosynthesis and plant water status in rice to low water temperature at different growth stages. Field Crops Research, 89: 71-83. [DOI:10.1016/j.fcr.2004.01.025]
22. HoshiKawa, K. 1975. Growth, of the rice plant. Nosan-gyson. Bunka-Kyokai, International Journal of Tokyo, 317 p.
23. Iten, M., T. Hoffmann and E. Grill. 1999. Receptors and signaling components of plant hormones. Journal of Receptor & Signal Transduction Research, 19(1-4): 41-48. [DOI:10.3109/10799899909036636]
24. Justin, S.H.F.W and W. Armstrong. 1987. The anatomical characteristics of roots and plant response to soil flooding. Journal of New Phytol, 106: 465-495. [DOI:10.1111/j.1469-8137.1987.tb00153.x]
25. Koocheki, A. and G. Sarmadnia. 2012. Crop physiology. SID Publication of Mashhad, (In Persian).
26. Limouchi, K. 2013. Effect of Different Planting Dates on the Anatomy of the Flag Leaf and Grain Yield of Rice Varieties in the Khuzestan Region, Iran. International Journal of Biology, 2(2): 19-27. [DOI:10.5539/ijb.v5n2p19]
27. Limouchi, K. and F. Farahvash. 2014. Effect of different planting dates on anatomy of the peduncle and grain yield of rice varieties in the north Khuzestan region. India Journal of Sciences Research and Technoloji, 2(2): 99-103.
28. Modarresi, M., V. Mohammadi, A. Zali and M. Mardi. 2010. Response of wheat yield and yield related traits to high temperature. Cereal Research Journal of Comm, 38: 23-31. [DOI:10.1556/CRC.38.2010.1.3]
29. Mostajeran, A. and V. Rhimi-Eichi. 2008. Drought stress effect on root anatomical characteristics of rice cultivars (oryza sativa. L.). Pakistan Journal of Biological Science, 11(18): 2173-2183. [DOI:10.3923/pjbs.2008.2173.2183]
30. Multu S, O. Atice and B. Nalbantoglu. 2009. Effect of salicylic acid and salinity on apoplastic and antioxidants enzymes in two wheat cultivars different in salt tolerant. Bioloji and Plant Journal, 53: 334-338. [DOI:10.1007/s10535-009-0061-8]
31. Painuli, D.K. 2000. Annual Report 1997-1999. All india coordinated research projecton soil physical constraints and their amelioration for sustainable crop production india institute of soil cierce, Bhopal, India, 133 p.
32. Park, G.H., J.H. Kim and K.M. Kim. 2014. QTL analysis of yield components in rice using a cheongcheong/nagdong doubled haploid genetic map. American Journal of Plant Sciences, 5: 1174-1180. [DOI:10.4236/ajps.2014.59130]
33. Qalavand, A. and M. Madandoost. 1998. Study of the effect of cultivation method and plant density on yield and growth curve of different rice cultivars in Isfahan region. Abstract Seeds and seedlings, (In Persian).
34. Radwan, D.E.M. and D.M. Soltan. 2012. The negative effects of clethodim in photosynthesis and gas exchange status of maize plants are ameliorated by salicylic acid pretreatment. Photosynthetica Journal, 50: 171-179. [DOI:10.1007/s11099-012-0016-8]
35. Shamsul, H. and A. Aqil. 2007. Salicylic Acid- A Plant Hormone. Springer Prints, Available:www. Spring com. Life Sciences, Plant Sciences.
36. Shibli, R.A., M. Kushad, G.G. Yousef, M.A. Lila. 2007. Physiological and biochemical responses of tomato micro shoots to induced salinity stress with associated ethylene accumulation. Plant Growth Regulation, 51: 159-169. [DOI:10.1007/s10725-006-9158-7]
37. Szalai, G., A. Krantev, R. Yordanova, L.P. Popova and T. Janda. 2013. Influence of salicylic acid on phytochelatin synthesis in Zea mays during Cd stress. Turkish Journal of Botany, 37: 708-714. [DOI:10.3906/bot-1210-6]
38. Szepesi, A., J. Csiszar, S.Z. Bajkan, K. Gemes, F. Horvath, L. Erdei, A. Deer, L.M. Simon and I. Tari. 2005. Role of salicylic acid pre-treatment on the acclimation of tomato plants to salt and osmotic stress. Acta Biologica Szegediensis, 49: 123-125.
39. Taslima, K., F. Hossain and U. Ara. 2011. Effect of indole-3-acetic acid (IAA) on biochemical responses of cowpea (Vigna unguiculata (L.) Walp) var. bari fellon-1. Bangladesh Journal of Scientific and Industrial Research, 46: 77-82. [DOI:10.3329/bjsir.v46i1.8110]
40. Zheng, G.L., L.I. yun, C. Shun-tang, Z. Hua and L. Guo-hua. 2009. Effects of high temperature stress on microscopic and ultrastratural charaeteris tics of meso phyll cells in flag leaves of rice. Journal of Rice Sciences, 16: 65-71. [DOI:10.1016/S1672-6308(08)60058-X]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
