دوره 12، شماره 33 - ( بهار 1399 )                   جلد 12 شماره 33 صفحات 184-191 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

AHMADI LIVANI M, POURAKBAR L, SATEII A, EBADI M, MAHDI A. Evaluation and Comparison of Germline a Synthetase (TpGAS) and Parthenolide Synthetase (Tppts) Genes Expression in Parthenolide Biosynthetic Pathway under Different Salinity Levels in Two Vegetative Stages of Feverfew Leaves (Tanacetum parthenium). jcb. 2020; 12 (33) :184-191
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1097-fa.html
احمدی لیوانی منصوره، پوراکبر لطیفه، ساطعی آرین، عبادی مهدی، محمدی ابوالقاسم. بررسی و مقایسه بیان ژن‌های ژرماکرن A سنتتاز (TpGas) و پارتنولید سنتتاز (TpPTs) در مسیر بیوسنتزی پارتنولید تحت سطوح مختلف شوری در دو مرحله رویشی برگ‌های گیاه بابونه‌ کبیر (Tanacetum parthenium). پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی. 1399; 12 (33) :184-191

URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1097-fa.html


دانشگاه ارومیه
چکیده:   (374 مشاهده)
     بابونه کبیر Tanacetum parthenium)) از خانواده آستراسه که در قدیم با عنوان داروی تب‌بر استفاده می‌شد و مهم ترین ماده تشکیل دهنده آن پارتنولید یک سزکوئی ترپن لاکتون‌ها است. پارتنولید یک ژرماکرانولید لاکتون است، که به علت ارزش دارویی و فعالیت فارماکولوژی، عامل پیشگیری کننده میگرن بوده و در معالجه سرطان بسیار مهم است. این تحقیق به منظور مطالعه تغییرات بیان ژن‌های مسیر بیوسنتزی پارتنولید، ژرماکرن A سنتتاز (GAS) و پارتنولید سنتتاز (PTS) گیاه بابونه کبیر به روش روش واکنش زنجیره‌ای پلیمراز در زمان واقعی (Real Time PC)  در سطوح مختلف شوری (شوری صفر EC=3.2، شوری ملایم EC=6.1، شوری متوسط EC=8.4 و شوری شدید EC=10.2) انجام شد و همچنین میزان پارتنولید تولید شده در برگ‌های جوان و بالغ گیاه با روش عصاره‌گیری HPLC به وسیله منحنی استاندرد پارتنولید و درصد اسانس توسط دستگاه GC/MS سنجیده شد.  نتایج نشان داد که بیان ژن‌های مورد مطالعه در برگ‌های جوان و بالغ گیاهان تحت تنش شوری نسبت به گیاهان شاهد افزایش یافت. بیشترین میزان بیان ژن (TpPTS) در برگ‌های جوان در شرایط شوری شدید (2/10Ec=) و در برگ‌های بالغ هم در شوری شدید (2/10Ec=) و هم در شوری متوسط (4/8Ec=) مشاهده شد. بیشترین میزان بیان ژن TpGAS در برگ‌های جوان و بالغ مربوط به تیمارهای شوری شدید و متوسط بود. همچنین باتوجه به نتایچ به دست آمده، بیشترین میزان پارتنولید در برگ‌های جوان به ترتیب در شرایط تیمار شوری شدید (5/1  میلی گرم در گرم اسانس) و کمترین آن  در نمونه شاهد 2/0 میلی‌گرم در گرم اسانس مشاهده شد. در برگ‌های بالغ نیز بیشترین میزان تولید پارتنولید مربوط به تیمار شوری شدید ( 18/1 میلی‌گرم در گرم اسانس) و کمترین مربوط به شاهد(1/0 میلی گرم در گرم اسانس) گزارش گردید. نتایج همبستگی بین ژن‌های ژرماکرن A سنتتاز و پارتنولید سنتتاز با میزان پارتنولید نشان داد که همبستگی مثبتی بین ژن‌های ژرماکرن A سنتتاز و پارتنولید سنتتاز با میزان پارتنولید وجود دارد.
متن کامل [PDF 449 kb]   (53 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: اصلاح براي تنش هاي زنده و غيرزنده محيطي
دریافت: 1398/9/11 | ویرایش نهایی: 1399/2/29 | پذیرش: 1398/12/10 | انتشار: 1399/2/29

فهرست منابع
1. Bernstein, N., M. Kravchik. and N. Dudai. 2009. Salinity-induced changes in essential oil, pigments and salts accumulation in sweet basil (Osimumba silicum) in relation to alteration of morphological development. Annals of Applied Biology, 156(2): 167-177. [DOI:10.1111/j.1744-7348.2009.00376.x]
2. Bettaieb, I., A. Zakhama, N. Wannes, W.A. Kchouk and M.E. Marzouk. B. 2008.Water deficit effects on Salvia officinalis fatty acids and essential oils composition.Scientia Horticulturae, 120(2): 271-275 [DOI:10.1016/j.scienta.2008.10.016]
3. Brown, A.M.G., C.M, Edwards, M.R. Davey, J.B. Power and K.C. Lowe. 1997. Effects of extracts of Tanacetum species on human polymorpho nuclear leucocyte activity in vitro., Phytotherapy Research, 11: 479-484. https://doi.org/10.1002/(SICI)1099-1573(199711)11:7<479::AID-PTR129>3.0.CO;2-W [DOI:10.1002/(SICI)1099-1573(199711)11:73.0.CO;2-W]
4. Cretnik, L., M.Skerget and Z. Knez. 2005. Separation of parthenolide from feverfew: performance of conventional and high-pressure extraction techniques. Separation and Purification Technology, 41: 13-20. [DOI:10.1016/j.seppur.2004.03.011]
5. Dennis, V.C., A. Awang, B. Dowson and D. G. kindack. 1991. Parthenolide content of feverfew (Tanacetum parthenium) assessed by HPLC and H-NMR spectroscopy. Journal of Plant Production, 54(6): 1991. pp: 1516-1521. [DOI:10.1021/np50078a005]
6. Groenewegen, W.A. and S. Heptinstall. 1992. Progress in the medicinal chemistry of the herb, feverfew. Progress in Medicinal Chemistry, 29: 217-238. [DOI:10.1016/S0079-6468(08)70009-2]
7. Hay, R.K.M. 1993. Physiology In: Volatile Oil Crops: Their Biology, Biochemistry and Production, eds., Hay R.K.M. and P.G. Waterman. Longman, England.23-46.
8. Hendawy, S.F. and Kh.A. Khalid. 2005. Response of sage (Salvia officinalis L.) plants to zinc application under different salinity levels. Journal of Applied Sciences Research, 1: 147-155.
9. Majdi, M., G. Karimzadeh and M.A. Malboobi. 2014. Spatial and developmental expression of key genes of terpene biosynthesis in feverfew (Tanacetum parthenium), Biologiaplantarum, 58: 379-384. [DOI:10.1007/s10535-014-0398-5]
10. Mansouri, I., H. Najafi Zarini, N.A. Babaian and A. Pakdedin. 2019. Evaluation of salinity tolerance of some rapeseed (Brassica napus L.) genotypes under normal and salinity stress conditions, Journal of Crop Breeding, 1(1): 4-5 (In Persian).
11. Mohammadzadeh Norouzi, M., S.A. Peyghambari, A.R. Nabipour and S. Fallah. 2009. Evaluation of response of rice genotypes to salinity stress at germination stage, Journal of Crop Breeding, 2(1): 4-5 (In Persian).
12. Pareek, A., M. Suthar, G.S. Rathore and V. Bansal. 2011. Feverfew (Tanacetum parthenium L.): A systematic review. Pharmacogn Rev, 5(9): 103-110. [DOI:10.4103/0973-7847.79105]
13. Parvin, N., R.A. Samani, N. Shahinfard, S. Reissi, Z. Alibabaie and A. Asgari. 2012. Effect of alcoholic extract of Tanacetum parthenium on acute pain in rat. Journal of Qazvin University of Medical Sciences, 16(1): 15-21.
14. Petropoulos, S.A., D. Daferera, M.G. Polissiou and H.C. Passam. 2008. The effect of water deficit stress on the growth, yield and composition of essential oils of parsley. Science Horticultural, 115: 393-397. [DOI:10.1016/j.scienta.2007.10.008]
15. Ramakrishna, A. and G.A. Ravishankar. 2011. Influence of abiotic stress signals on secondary metabolites in plants. Plant Signaling and Behavior, 6: 1720-1731. [DOI:10.4161/psb.6.11.17613]
16. Rohmer, M., M. Knani, P.Simonin, B. Sutter and H. Sahm. 1993. Isoprenoid biosynthesis in bacteria: a novel pathway for the early steps leading to isopentenyldiphosphate- Biochem. Journal, 295: 517-524. [DOI:10.1042/bj2950517]
17. Sharopov, F.S., W.N. Setzer, S.J. Isupov and M. Wink. 2015. Composition and bioactivity of the essential oil of Tanace tum parthenium from a wild population growing in Tajikistan Pharmacogn Rev, 2(4): 4-32.
18. Singh, G., G. Singh, P. Singh, R. Parmar, N. Paul, R. Vashist, M. Kumar Swarnkar, A. Kumar, S. Singh, S. Kumar Singh and S. Kumar. 2017. Molecular dissection of transcriptional reprogramming of steviol glycosides synthesis in leaf tissue during developmental phase transitions in Stevia rebaudiana Bert. Scientific Reports, 7: 11835. [DOI:10.1038/s41598-017-12025-y]
19. Williams, C.A., J.R.S. Hoult, J.B. Harborne, J. Greenham and J. Eagles. 1995. Biologically-active lipophilic flavonol from Tanacetum parthenium, Phytochemistry, 38: 267-270. [DOI:10.1016/0031-9422(94)00609-W]
20. Zeng, Q.P., X.M. Zeng, R.Y. Yang and X.Q. Yang. 2011. Singlet oxygen as a signaling transducer for modulating artemisinin biosynthetic genes in Artemisia annua. - Plant Biology, 55: 669-674. [DOI:10.1007/s10535-011-0166-8]
21. Zhao, C., Y. Zu and C.Li. 2009. Extraction of solanesol from tobacco (Nicotiana tobaccum L.) leaves by bubble column. Chemical Engineering and Processing, 48: 203-8. [DOI:10.1016/j.cep.2008.03.005]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2020 All Rights Reserved | Journal of Crop Breeding

Designed & Developed by : Yektaweb