دوره 12، شماره 34 - ( تابستان 1399 )                   جلد 12 شماره 34 صفحات 54-61 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Sheikhi M, fahmideh L, Benakashani F, Solouki M. Investigation of the direct regeneration from node explant of Capparis spinosa L. in MS medium containing different hormones. jcb. 2020; 12 (34) :54-61
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1011-fa.html
شیخی حموله مژده، فهمیده لیلا، بناءکاشانی فاطمه، سلوکی محمود. بررسی باززایی مستقیم از ریزنمونه گره گیاه علف مار (Capparis spinosa L.) در محیط کشت MS حاوی تنظیم کننده های رشدی مختلف. پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی. 1399; 12 (34) :54-61

URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1011-fa.html


دانشگاه زابل
چکیده:   (290 مشاهده)
   علف مار یا کبر با نام علمی Capparis spinosa L. از گیاهان دارویی بوته‌ای و چندساله اقلیم‌های گرم و خشک است که در تابستان رشد می‌کند. این گیاه حاوی ترکیبات مهمی از جمله فلاونوئیدها، ترپن‌ها، آلکالوئیدها، گلیکوزیدها و گلیکوزینولات‌ها می‌باشد. علی‌رغم نیاز روزافزون برای تکثیر انبوه این گیاه، اطلاعات کمی در مورد روش‌های ازدیاد آن وجود دارد. در این پژوهش برگ لپه­ ای، برگ، غنچه، پرچم، محور روی لپه، ریشه، گلبرگ، کاسبرگ و گره در محیط کشت MS حاوی تنظیم ­کننده­ های رشدی KIN،NAA ، BAP وIBA  با غلظت­های مختلف به­ منظور باززایی مستقیم گیاهچه، برای تولید شاخساره کشت شدند، تا بهترین محیط‌ کشت­ها برای تولید شاخساره و ریشه در کشت درون شیشه‌ای ریزنمونه ­های مختلف گیاه علف مار شناسایی شود. در آزمایش حاضر به ­جزء ریزنمونه­ های گره، هیچ کدام از ریزنمونه­ ها باززایی نشان ندادند و میزان باززایی سایر ریزنمونه­ ها صفر بود. باززایی گیاه علف مار در مدت 5 تا 8 هفته از ریزنمونه گره حاصل شد. بهترین محیط برای تولید شاخساره محیط MS حاوی 2 میلی­گرم بر لیتر BAP و بهترین محیط ریشه‌دهی محیط MS حاوی 1 میلی­ گرم بر لیتر  NAAبود.  با توجه به اهمیت گیاه دارویی علف مار­ و مشکل تکثیر این گیاه از طریق بذر، استفاده از این محیط‌ها و ریزنمونه‌ گره به­منظور تکثیر این گیاه در شرایط کشت درون شیشه ای پیشنهاد می ­گردد.
متن کامل [PDF 1002 kb]   (49 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: بيوتكنولوژي گياهي
دریافت: 1397/9/17 | ویرایش نهایی: 1399/5/26 | پذیرش: 1398/12/10 | انتشار: 1399/4/10

فهرست منابع
1. Amini, F., Z. Ganbarzade and M. Askary Mehrabadi. 2013. Optimization of callus Production and Plant Regeneration in Salsola arbuscula pall. Journal cell and tissue, 4: 129-137 (In Persian).
2. Ayanoglu, A. and A. Mert. 1999. The effect of different Tratification duration and chemical treatment on the emergence of the seeds of two caper species (Capparis Spinosa L. and Capparis Ovata Desf). Turkish journal of botany, 5: 77-80. [DOI:10.1501/10.501/Tarimbil_0000000027]
3. Benson, E.E., J.E. Danaher, I.M. Pimbley, C.T. Anderson, J.E. Wake, S. Daley and L.K. Adams. 2000. In vitro micropropagation of Primula scotica: a rare Scottish plant. Journal of biodiversity and conservation, 9: 711-726. [DOI:10.1023/A:1008941726419]
4. Carra, A., M. Sajeve, L. Abbate, M. Siragusa, F. Sottile and F. Carimi. 2012. In vitro Plant Regeneration of caper (Capparis spinosa L.) from Floral Explants and Genetic Stability of Regenerants. Journal plant cell tissue organ culture, 109: 373-381. [DOI:10.1007/s11240-011-0102-9]
5. Chahar, O.P., P. Kharb, S.F. Ali, P. Batra and V.K. Chowdhury. 2010. Development of protocol on micropropagation in Ker (Capparis decidua (forsk) edgew). World. Applied. Sciences. Journal, 10: 695-698.
6. Chalak, L. and A. Elbitar. 2006. Micropropagation of Capparis spinosa L. Subsp. Rupestris Sibth. & Sm. By Nodal Cuttings. Journal Indian of biotechnology, 5: 555-558.
7. Debnath, M., C.P. Malik and P.S. Bisen. 2006. Micropropagation: a tool for the production of high quality plant-based medicines. Pharm biotechnology, 7: 33-49. [DOI:10.2174/138920106775789638]
8. Dixon, R.A. and R.A. Gonzales. 1996. Plant cell culture: a practical approach. Edited by R.A. Dixon. IRL press, Oxford, UK, 252 pp.
9. Dodds, J.H. and L.W. Robert. 1995. Experiments in plant tissue culture. Cambridge University Press, 256 pp.
10. Fahmideh, L., Gh.A. Ranjbar, O. Alishah and N.A. Babaeian Jelodar. 2015. Plant regeneration from 6 Cotton (Gossypium hirsutum L.) Genotypes through somatic embryogenesis. Journal of Crop Breeding, 7(16): 40-48 (In Persian).
11. Fahmideh, L., Gh.A. Ranjbar, O. Alishah and N.A. Babaeian Jelodar. 2010. Study of Callus Induction and Somatic Embryogenesis in Cotton. Journal crop breed, 2: 67-80 (In Persian).
12. Fathi, G. and B. Ismailpour. 2010. Plant growth regulators (principles and applications). Mashhad Jehad-Danshgahi Press, 288 pp (In Persian).
13. Fazekas, G.A., P.A. Sedmach and M.V. Palmer. 1986. Genetic and environmental effects on in vitro shoot regeneration from cotyledonary explants of Brassica juncea. Plant cell, tissue and organ culture, 6: 177-180. [DOI:10.1007/BF00180802]
14. Gadzovska, S., S. Maury, A. Delaunay, M. Spasenoski, J. Joseph and D. Hagege. 2007. Jasmonic acid elicitation of Hypericum perforatum L. cell suspensions and effects on the production of phenylpropanoids and naphtodianthrones. Plant cell tissue culture, 89: 1-13. [DOI:10.1007/s11240-007-9203-x]
15. George, L. and P.S. Rao. 1980. In vitro regeneration of mustard plants (Brassica juncea var. Rai-5) on cotyledon explants from non-irradiated irradiated and mutagen-treated seed. Annals of botany, 46: 107-112. [DOI:10.1093/oxfordjournals.aob.a085886]
16. Ghanti, K., C.P. Kaviroj, R.B. Venugopal, F.T.Z. Jabeen and S. Rao. 2003. Rapid regeneration of Mentha piperita L. from shoot tip and nodal explants. Journal Indian of biotechnology, 3: 594-598.
17. Ghasemi, B.J., G.I. Karlov and A. Ahmadikhah. 2007. Effects of genotype explant type and nutrient medium components on canola (Brassica napus L.) shoot in vitro organogenesis. Journal African of biotechnology, 6: 861-867.
18. Ghotbzadeh Kermani, S., Sh. Pourseyedi, Gh.A. Mohamadi, A. Moieni and A. Baghizadeh. 2015. Regeneration of White top (Cardaria draba L.) using issue Culture. Journal of Agricultural biotechnology, 7: 134-154.
19. Guo, Dp., Z.J. Zhu, X.X. Hu and S.J. Zheng. 2005. Effect of cytokinins on shoot regeneration from cotyledon and leaf segment of stem Mustard (Brassica juncea var. tsatsai). Plant cell, tissue and organ culture, 83: 123-127. [DOI:10.1007/s11240-005-3799-5]
20. Hemmati, K.H., A. Ghasem Nejad, K. Mashayekhi and P. Bashiri Sadr. 2012. Study of the effect of habitat on the amount of some flavonoid compounds of lime tree (Tilia platifolia L.). Journal of plant production research, 19: 148-141 (In Persian).
21. Jain, R.K., J.B. Chowdhury, D.R. Sharma and W. Friedt. 1988. Genotypic and media effects on plant regeneration from cotyledon explant cultures of some Brassica species. Plant cell, tissue and organ culture, 14: 197-206. [DOI:10.1007/BF00043410]
22. Khanfar, M.A., S.S. Sabri, M.H. Zarga and K.P. Zeller. 2003. The chemical constituents of Capparis spinosa of Jordanian origin. Natural product research, 17: 9-14. [DOI:10.1080/10575630290034302]
23. Kontaxis, D.C. 1989. Capers: A new crop for California. California University Press, USA.
24. Lowrence, G.H.M. 1951. Taxonomy of vascular plants. The Macmillan Company New York, 823 pp.
25. Masoumi Asl, A., A. Aryan Nezhad and M. Dehdari. 2015. Investigation of direct regeneration in Matricaria chamomilla L. and Sharia (Matricaria recutita L.) in vitro. Journal of horticulture, 29: 601-609.
26. Matthaus, B. and M. Ozcan. 2002. Glucosinolate composition of young shoots and flower buds of Capers (Capparis species) growing wild in Turkey. Journal of agriculture and food chemistry, 50: 7323-7325. [DOI:10.1021/jf020530+]
27. Meftahizade, H., H. Moradkhani, B. Naseri, M. Lotfi and A. Naseri. 2010. Improved in vitro culture and micropropagation of different Melissa officinalis L. genotypes. Medicinal plant research, 4: 240-246.
28. Mitra, S.K. and K.K. Mukherjee. 2001. Direct organogenesis in Indian spinach. Plant cell, tissue and organ culture, 67: 191-194. [DOI:10.1023/A:1011924508698]
29. Movafeghi, A., G.H. Habibi and M. Aliasgar pour. 2008. Journal of biologic of Iran, 21: 289- 297 (In Persian).
30. Noroozi Sharaf, A.R., M. Gholami, Y. Hamidoghli and H. Zakizadeh. 2012. In Vitro propagation of primrose (Primula Acaulis L.), via shoot tip explants. Agricultural biotechnology, 2: 35-41 (In Persian).
31. Ono, Y., T. Yoshinito and N. Kazuma. 1994. Effect of genotype on shot regeneration from cotyledonary explants of rape seed (Brassica napus L.). Plant cell reporters, 14: 13-17. [DOI:10.1007/BF00233290]
32. Orphanos, P.I. 1983. Germination of Caper (Capparis spinosa L.) seeds. Journal of horticultural Science, 58: 267-270. [DOI:10.1080/00221589.1983.11515119]
33. Ozyigit, I.I. 2009. In vitro shoot development from three different nodes of cotton (Gossypium hirsutum L.). Not. Bot. Hort. Agrobot. Cluj-Napoca, 37: 74-78.
34. Ozyigit, I.I. and N. Gozukirmizi. 2008. High efficiency shoots and root formation from cotyledonary nodes of cotton (Gossypium hirsutum L.). Journal Pakistan of botany, 40: 1665-1672.
35. Rodrigues, R., M. Rey, L. Cuozzo and G. Ancora. 1990. In vitro propagation of caper (Spinose L.). In vitro cellular and developmental biology, 26: 531-536. [DOI:10.1007/BF02624097]
36. Sozzi, G.O. and A. Chiesa. 1995. Improvement of Caper (Capparis spinosa L.) seed germination by breaking seed coat-induced dormancy. Journal of horticultural sciences, 62: 255-262. [DOI:10.1016/0304-4238(95)00779-S]
37. Srivastava, S. and A.K. Srivastava. 2007. Hairy Root Culture for Mass-Production of High-value secondary metabolites. Crit Rev Biotechnol, 27: 29-43. [DOI:10.1080/07388550601173918]
38. Stephens, J.M. 2001. Capers: Capparis spinose L. University of Florida USA, On Internet: http://edis.ifas.ufl.edu/pdffiles/MV/MV04000.pdf
39. Zaker Tavallaie, F., A. Bagheri, B. Ghareyazie and K.K. Sharma. 2009. Optimization of tissue culture condition in lentil (Lens culinaris Medik. cv. Gachsaran) to induce effective multiple shoot induction. Journal Iranian agronomy research, 7: 411-419 (In Persian).
40. Zohary, M. 1969. The species of Capparis in the Mediterranian and the near Easter Countries. Bull research council Israel, 8: 49-64.

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2020 All Rights Reserved | Journal of Crop Breeding

Designed & Developed by : Yektaweb