دوره 14، شماره 41 - ( بهار 1401 )                   جلد 14 شماره 41 صفحات 137-129 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


استادیار گروه علوم گیاهی و گیاهان دارویی، دانشکده کشاورزی مشگین‌شهر، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
چکیده:   (1399 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه و هدف:
در تحقیق حاضر به بررسی اثرات پرتوهای حاصل از پسماندهای مواد رادیو اکتیو در یک معدن متروکه اورانیوم در تغییر کمیت و کیفیت محتویات متابولیتی اسانس درمنه کوهی پرداخته شده است.
مواد و روش­ ها: جهت دسترسی کامل به اطلاعات آلودگی تابشی منطقه مورد مطالعه نقشه تشعشعات رادونی نقطه به نقطه در 10 نقطه با استفاده از دستگاه تابش سنج طی دو سال متمادی مورد سنجش قرار گرفت. این اندازه ­گیری مشتمل بر نقاط هم ارتفاع در دو کوه مقابل هم (کوه دارای نقاط حاوی مواد راداکیتو A و کوه نقاط فاقد مواد رادیواکتیو B) بود. نمونه ­برداری از سرشاخه­ های گیاه درمنه کوهی (Artemisia absinthium) بصورت سیستماتیک و در سه تکرار مختلف انجام پذیرفت. اسانس موجود در سرشاخه­ ها به روش تقطیر با بخار آب استخراج گردیده و با استفاده از کروماتوگرافی گازی مجهز به طیف سنجی جرمی (GC- Mass) متابولیت­های تشکیل­ دهنده اسانس جداسازی و شناسایی شدند.
یافته­ ها: آزمون مقایسات میانگین (P<0.01) با استفاده از نرم­ افزار آماری GenStat12.1 به روش فیشر حفاظت شده، تغییرات معنی داری را در مقادیر متابولیت­ ها در هر دو نقطه مورد مطالعه نشان داد. به­ طوری ‌که در ارتفاع 930 متر با بالاترین میزان شدت رادیو­اکتیو 1.8 میلی سیوورت (A930/R1.8)، در مقایسه با نقطه شاهد (B930/R0.16) تغییرات افزایشی در مقادیر متابولیت­ های گاما ترپینن، اکالیپتول، توژون و کامفور مشاهده شد.
نتیجه ­گیری: قرار گرفتن طولانی ­مدت گیاهان چند­ساله در معرض تابش‌های محیطی منجر به تغییرات بیوشیمیایی شده که ممکن است در نتیجه جهش ­زایی عناصر پرتوزا در ژن‌های دخیل در مسیرهای بیوسنتزی متابولیت‌های ثانویه باشد.

 
متن کامل [PDF 1638 kb]   (467 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: ساير
دریافت: 1400/9/15 | ویرایش نهایی: 1401/3/1 | پذیرش: 1400/11/23 | انتشار: 1401/1/10

فهرست منابع
1. Azzam, E.I., J.P. Jay-Gerin and D. Pain. 2012. Ionizing radiation-induced metabolic oxidative stress and prolonged cell injury. Cancer Letter, 6: 327: 48. [DOI:10.1016/j.canlet.2011.12.012]
2. Baenas, N., C. Garcia-Viguera and D.A. Moreno. 2014. Elicitation: a tool for enriching the bioactive composition of foods. Molecules, 19: 13541-13563. [DOI:10.3390/molecules190913541]
3. Cheynier, V., G. Comte, K.M. Davies, V. Lattanzio and S. Martens. 2013. Plant phenolics: recent advances on their biosynthesis, genetics and ecophysiology. Plant Physiol Biochem, 72: 1-20. [DOI:10.1016/j.plaphy.2013.05.009]
4. El-Garhy, H.A., S. Khattab, M.M. Moustafa Ali, R.A. Azeiz, A.Z.A. Elhalwagi and A.E. Sherif. 2016. Silybin content and over expression of chalcone synthase genes in Silybum marianum L. plants under abiotic elicitation. Plant Physiol Biochem, 108: 191-202. [DOI:10.1016/j.plaphy.2016.07.011]
5. Fulzele, D.P., R. Satdive, S. Kamble, S. Singh and S. Singh. 2015. Improvement of anticancer drug camptothecin production by gamma irradiation on callus cultures of Nothapodytes foetida. International Journal of Pharmaceutical Research and Allied Sciences, 4: 19-27.
6. Hao, X.L.M., L.C. Shi, C.h. Xu, Y. Zhang and G. Kai. 2014. Effects of methyl jasmonate and salicylic acid on the tanshinone production and biosynthetic genes expression in transgenic Salvia miltiorrhiza hairy roots. Biotechnology and Applied Biochemistry, 62: 24-31. [DOI:10.1002/bab.1236]
7. Hozayn, M., A.A. El-Mahdy and H.M.H. Abdel-Rahman. 2015. Effect of magnetic field on germination, seedling growth and cytogenetic of onion (Allium cepa L.). African Journal of. Agricultural Research, 10(8): 57-849. [DOI:10.5897/AJAR2014.9383]
8. Kai, G., X. Hao, L. Cui, X. Ni, D. Zekaria and J.Y. Wu. 2014. Metabolic engineering and biotechnological approaches for production of bioactive diterpene tanshinones in Salvia miltiorrhiza, Biotechnology Advances, 50(14): 5-15. [DOI:10.1016/j.biotechadv.2014.10.001]
9. Kebeish, R., E.D. Hanan and N. El-Bitaly. 2015. Effects of gamma radiation on growth, oxidative stress, antioxidant system and alliin producing gene transcripts in Allium Sativum. International Journal of Research Studies in Biosciences, 3: 161-174.
10. Khalil, S.A., N. Ahmad and R. Zamir. 2015. Gamma radiation induced variation in growth characteristics and production of bioactive compounds during callogenesis in Stevia rebaudiana (Bert.). New Negatives in Plant Science, 1: 1-5. [DOI:10.1016/j.neps.2015.06.002]
11. Koobkokkruad, T.H., P. Wanichananan, C. Kirdmanee and W. De-Eknamkul. 2019. Gamma irradiation causes variation and stability of artemisinin content in Artemisia annua plants. Techniques in peaceful applications. DOI: 10.5772/intechopen.82385. [DOI:10.5772/intechopen.82385]
12. Laule, O., A. Fürholz, H.S. Chang, T. Zhu, X. Wang, P.B. Heifetz, W. Gruissem and M. Lange. 2003. Crosstalk between cytosolic and plastidial pathways of isoprenoid biosynthesis in Arabidopsis thaliana. Proceedings of the National Academy of Sciences, 100(11): 6866-6871. [DOI:10.1073/pnas.1031755100]
13. Shi, M., W. Zhou, J. Zhang, Sh. Huang, H. Wang and G. Kai. 2016 a. Methyl jasmonate induction of tanshinone biosynthesis in Salvia miltiorrhiza hairy roots is mediated by jasmonate zim-domain repressor proteins. Scientific Reports, 6: 20919. [DOI:10.1038/srep20919]
14. Shi, M., X. Luo, G. Ju, L. Li, Sh. Huang, T. Zhang, H. Wang and G. Kai. 2016b. Enhanced diterpene tanshinone accumulation and bioactivity of transgenic Salvia miltiorrhiza hairy roots by pathway engineering. Journal of agricultural food chemistry, 64: 2523-2530. [DOI:10.1021/acs.jafc.5b04697]
15. Shi, M., X.Q. Luo, G.H. Ju, X.H. Yu, X.L. Hao, Q. Huang, J.B. Xiao, L.J. Cui and G.Y. Kai. 2014. Increased accumulation of the cardio-cerebrovascular disease treatment drug tanshinone in Salvia miltiorrhiza hairy roots by the enzymes 3-hydroxy-3-methylglutaryl CoA reductase and 1-deoxy-D-xylulose 5-phosphate reductoisomerase. Functional & Integrative Genomics, 14: 603-615. [DOI:10.1007/s10142-014-0385-0]
16. Vivek Vardhan, P. and L.I. Shukla. 2017. Gamma irradiation of medicinally important plants and the enhancement of secondary metabolite production, International journal of Radiation biology, 93(9): 967-979. [DOI:10.1080/09553002.2017.1344788]
17. Wada, K.C., K. Mizuuchi, A. Koshio, K. Kaneko, T. Mitsui and K. Takeno. 2014. Stress enhances the gene expression and enzyme activity of phenylalanine ammonia-lyase and the endogenous content of salicylic acid to induce flowering in pharbitis. Journal of Plant Physiology, 171: 895-902. [DOI:10.1016/j.jplph.2014.03.008]
18. Wang, G., L. Wu, H. Zhang, W. Wu, M.L. Zhang, X.H. Wu. 2016. Regulation of the phenylpropanoid pathway: a mechanism of selenium tolerance in peanut (Arachis hypogaea L.) seedlings. Agriculture Food Chemistry, 64: 3626-3635. [DOI:10.1021/acs.jafc.6b01054]
19. Xu, X., Q. Jiang, X. Ma, Q. Ying, B. Shen, Y. Qian, H. Song and H. Wang. 2014. Deep sequencing identifies tissue-specific micro-RNAs and their target Genes involving in the biosynthesis of tanshinones in Salvia miltiorrhiza. Plos one, 9(11): e111679. [DOI:10.1371/journal.pone.0111679]
20. Yang, J., M.A. Adhikari, H. Liu, H. Xu, G. He, R. Zhan, J. Wei and W. Chen. 2012. Characterization and functional analysis of the genes encoding 1-deoxy-D-xylulose-5-phosphate reducto isomerase and 1-deoxy-D-xylulose-5-phosphate synthase, the two enzymes in the MEP pathway, from Amomum villosum L. Molecular Biology Reports, 39: 8287-8296. [DOI:10.1007/s11033-012-1676-y]
21. Yang, L., W. Kui-Shan, R. Xiao, Z. Ying-Xian, W. Feng and W. Qiang. 2018. Response of plant secondary metabolites to environmental factors. Molecules, 23(4): 762. [DOI:10.3390/molecules23040762]

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.