دوره 9، شماره 21 - ( بهار 1396 )
جلد 9 شماره 21 صفحات 174-166 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
(2017).
The Effect of Growth Regulators on Callus Induction and Regeration in citrus Rootstock
. jcb. 9(21), 166-174. doi:10.29252/jcb.9.21.166
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-808-fa.html
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-808-fa.html
حسینی سیدزهرا، بابائیان جلودار نادعلی، رحیمیان حشمت اله، رنجبر غلامعلی. تاثیر تنظیم کننده های رشد بر القای کالوس و باززایی برخی پایههای مرکبات پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی 1396; 9 (21) :174-166 10.29252/jcb.9.21.166
چکیده: (3738 مشاهده)
به منظور بررسی تاثیر تنظیمکنندههای رشد بر القای کالوسزایی و باززایی پایههای مختلف مرکبات، پنج پایه مرکبات انتخاب شد. بعد از استریل بذرها به محیط کشت و دمای 25 درجه سانتیگراد با 16 ساعت روشنایی و هشت ساعت تاریکی قرار داده شد و بعد از گذشت یک ماه ریز نمونههایی از برگهای جوان تهیه شدند. القای کالوس روی محیط کشت EME تحت آزمایش فاکتوریل با سه عامل رقم در پنج سطح (نارنج، پونسیروس، سیترنج، سیتروملو، ولکامریانا)، غلظت هورمون NAA در سه سطح (5/0، 1، 5/1 میلیگرم در لیتر) و غلظت هورمون Kin در سه سطح (3، 4، 6 میلی گرم در لیتر) در قالب طرح پایه کاملا تصادفی با سه تکرار انجام شد. در مرحله باززایی کالوس، 5 پایه مرکبات با 5 ترکیب هورمونی تحت آزمایش فاکتوریل در قالب طرح کاملا تصادفی با سه تکرار مورد بررسی قرار گرفت. براساس نتایج، بیشترین درصد کالوسزایی رقم نارنج مربوط به 5/0 میلیگرم در لیتر NAA +سه میلیگرم در لیتر Kin (25 درصد)، بیشترین درصد کالوسزایی رقم پونسیروس مربوط به یک میلیگرم در لیتر NAA +سه میلیگرم در لیتر Kin (100 درصد) و 5/1 میلیگرم در لیترNAA + سه میلیگرم در لیتر Kin (100 درصد) بوده است. در مورد رقم سیترنج بیشترین درصد کالوسزایی مربوط به 5/0 میلیگرم در لیترNAA + شش میلیگرم در لیتر Kin (91 درصد) و سیتروملو مربوط به یک میلیگرم در لیتر NAA + سه میلیگرم در لیتر Kin (92 درصد) و در رقم ولکامریانا بیشترین درصد کالوسزایی مربوط به 5/1 میلیگرم در لیتر NAA + سه میلیگرم در لیتر Kin (100 درصد) بوده است. فراوانی کالوسزایی غالبا متاثر از تنظیمکنندههای رشدی NAA و Kin با غلظتهای 1.5 و سه میلیگرم در لیتر بود. همچنین BA و NAA در باززایی موثر شناخته شده اند. به نحوی با افزودن سه میلیگرم در لیتر Kin به محیط کشت، کالوسدهی و 2/0 میلیگرم BA و یک میلیگرم NAA باززایی از کالوس افزایش یافته است.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
اصلاح نباتات، بیومتری
دریافت: 1396/5/9 | پذیرش: 1396/5/9 | انتشار: 1396/5/9
دریافت: 1396/5/9 | پذیرش: 1396/5/9 | انتشار: 1396/5/9
فهرست منابع
1. Ahmadi Hesar, A., B. Kaviani, A. Tarang and S. Bohlooli Zanjani. 2011. Effect of different concentrations of kinetin on regeneration of ten weeks (Matthiola incana). Plant Omics Journal, 4: 236-238.
2. Azim Fazle, M.M., H. Rahman Shamsul, U. Prodhan Saif, S. Nayem Zobayer and M. Ashrafuzzaman. 2011. Development of efficient callus initiation of malta (Citrus sinensis) through tissue culture. International Journal of Agricultural Research Innovation and Technology, 1: 64-68. [DOI:10.3329/ijarit.v1i1-2.13935]
3. Balch, M. and N. Alejo. 1997. In Vitro Plant Regeneration of Mexican Lime and Mandarin by Direct Organogenesis. HortScience, 32: 931-934. [DOI:10.21273/HORTSCI.32.5.931]
4. Benelli, C., M.A. Germana, T. Ganino, D. Beghe and A. Fabbri. 2010. Morphological and anatomical observations of abnormal somatic embryos from anther cultures of Citrus reticulata. Biologia Plantarum, 54: 224-230. [DOI:10.1007/s10535-010-0040-0]
5. Chatzissavvidis, C.H., Ch. Antonopoulou, I. Papadakis, I. Therios and K. Dimassi. 2010. Effects of NAA and vitamin B2 on in vitro rooting of Citrus. Acta Agriculturae Scandinavica, Section B-Soil & Plant Science, 60: 189-192. [DOI:10.1080/09064710902785300]
6. FAO. 2013. Statistical year book. World food and agriculture. 307 pp.
7. Fattah, B., M. Sohani, A. Afshari and B. Goleyn. 2011. The role of plant hormones BAP and NAA on the Regeneration and Organogenesis citrus in vitro culture. 12 Congress of Genetics, Tehran, Iranian Genetics Association, 5 pp (In persion).
8. Filho, J.C.B., A.K. Kobayashi, L.F.P. Peirera, Z. Hissano and L.G.E. Vieira. 2001. In vitro adventitious shoot regeneration from sweet orange using thin epicotyl sections. Crop Breeding and Applied Biotechnology, 1: 27-34. [DOI:10.13082/1984-7033.v01n01a03]
9. Fraternale, D., L. Giamperi,. B. Anahi and C. Pierpaolo. 2010. In vitro plant regeneration from callus of Citrus × monstruosa (Pompia) an endemic citrus of Sardinia. Natural Product Communications, 5: 927-930. [DOI:10.1177/1934578X1000500624]
10. Gholami, A., A. Majd, V. Alavi and P. Fallahian. 2011. Somatic embryogenesis and plant regeneration of orange seed. Journal of Plant Science, 27: 56-63.
11. Goswami, K., R. Sharma , P.K. Singh and G. Singh. 2013. Micropropagation of seedless lemon (Citrus limon L. cv. Kaghzi Kalan) and assessment of genetic fidelity of micropropagated plants using RAPD markers. Physiology and Molecular Biology of Plants, 19: 137-45. [DOI:10.1007/s12298-012-0148-0]
12. Ibrahim, M.A. 2012. In vitro plant regeneration of local pummelo (Citrus grandis (L.) Osbeck.) via direct and indirect organogenesis. Genetics and Plant Physiology, 2: 187-191.
13. Jafari Mofidabaadi, I. and M. Miri. 2011. in vitro culture of embryos and Nucelar sexually mature in orange (Citrus aurantium), National Science and Technology Conference seed, Mashhad, Islamic Azad University of Mashhad, 4 pp (In Persion).
14. Ramdan, R., N. Handaji, H. Beyahia and M. Ibriz. 2014. Influence of growth regulators on callus induction from embryos of five citrus rootstocks. Journal of Applied Biosciences. 73: 5959-5965.
15. Rastgoo, S. 2011. In Vitro Regeneration of Citrus: A Case Study on Pummelo (Citrus grandis [L.] Osbeck). Lap Lambert Academic Publishing. 184 pp.
16. Saini, H.K. and M.S. Gill. 2010. Direct shoot organization and plant regeneration in rouph lemon. Indian Journal Biotechnol, 9:419-423.
17. Sarma, C., A. Borthakur, S. Singh, M.K. Modi and P. Sen. 2011. Efficient in vitro plant regeneration from cotyledonary explants of Citrus reticulata L. Blanco. Annals of Biological Research, 2: 341-348.
18. Savita, S.B., G.S. Virk and A.K. Nagpal. 2011. An efficient plant regeneration protocol from callus cultures of Citrus jambhiri Lush. Physiology and Molecular Biology of Plants, 17: 161-9. [DOI:10.1007/s12298-011-0055-9]
19. Savita, V, G.S. Virk and N. Avinash. 2010. Effect of Explant Type and Different Plant growth Regulators on Callus Induction and Plantlet Regeneration in Citrus jambhiri Lush. International Journal of Food Science & Technology, 5: 97-106.
20. Singh, S., B.K. Ray, S. Bhattacharyya and P.C. Deka. 1994. In Vitro Propagation of Citrus reticulata Blanco and Citrus limon. Hortscience. 29: 214-216. [DOI:10.21273/HORTSCI.29.3.214]
21. Usman, M., S. Muhammad and B. Fatima. 2005. In vitro multiple shoot induction from nodal explants of Citrus cultivars. Journal of Central European Agriculture, 6: 435-442.
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
