دوره 8، شماره 18 - ( تابستان 1395 )                   جلد 8 شماره 18 صفحات 166-175 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print

Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Evaluated of Effect of Cold Stress on Proline, Malondialdehyde and Photosynthetic Pigments in Seedling Stage of Sesame (Sesamum indicum L.) Genotypes. jcb. 2016; 8 (18) :166-175
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-653-fa.html
آکی فرشته، کاظمی تبار سید کمال، هاشمی سید حمیدرضا، نجفی زرینی حمید. بررسی اثر تنش سرما در مرحله گیاهچه‌ای بر میزان پرولین، مالون‌دی‌آلدهید و رنگیزه‌های فتوسنتزی در ژنوتیپ‌های کنجد (Sesamum indicum L.) . پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی. 1395; 8 (18) :166-175

URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-653-fa.html

چکیده:   (945 مشاهده)

کنجد (Sesamum indicum L.) یکی از گیاهان گرمسیری حساس به سرما می­باشد. به­منظور بررسی میزان تحمل ژنوتیپ­های مختلف کنجد در برابر تنش سرما و نیز تأثیر سرما بر خصوصیات فیزیولوژیکی آن­ها، آزمایشی در قالب طرح کاملاً تصادفی بر روی ده ژنوتیپ شامل ورامین، قائم، اولتان، یکتا، دشتستان2، داراب1، ناز تک شاخه، ناز چندشاخه، جهاد و نیشابور در سه تکرار انجام شد. ژنوتیپ­ها به مدت سه شبانه روز تحت دمای 8 درجه سانتی­گراد قرار گرفته و نمونه­های برگی در زمان­های صفر (قبل از اعمال تنش)، 6، 12، 24 و 48 ساعت تهیه شد. بیشترین مقدار کلروفیل a با گذشت 48 ساعت از تنش سرما، به رقم ناز چندشاخه و کمترین آن به رقم ورامین و پس از آن رقم نیشابور اختصاص یافت. در مورد کلروفیل b، پس از 72 ساعت، رقم ناز چندشاخه و پس از آن رقم جهاد بیشترین و رقم نیشابور کمترین مقدار را داشتند. از نظر میزان کاروتنوئید تنها در زمان صفر و ابتدای تنش (زمان 6)، به طور معنی­داری در بین ژنوتیپ­ها اختلاف وجود داشت و با پیشروی تنش، تغییرات کاروتنوئید در ده ژنوتیپ به گونه­ای بود که تفاوت معنی‌داری یافت نشد. روند تغییرات پرولین به­صورت افزایشی بوده و با پیشروی تنش سرما، همه ژنوتیپ­ها با تجمع پرولین همراه بودند. تفاوت­ بین ژنوتیپ­ها هم در شرایط تنش و هم بدون تنش (زمان صفر) معنی­دار بوده و در همه زمان­ها، بیشترین مقدار پرولین در رقم ناز چندشاخه و کمترین آن در رقم نیشابور تجمع یافت. تغییرات مالون
دی­آلدهید در ژنوتیپ­ها، در زمان­های مختلف متفاوت بوده و در پایان تنش سرما رقم نیشابور و پس از آن رقم داراب1 بیشترین و رقم ناز چندشاخه کمترین مقدار مالون دی­آلدهید را به خود اختصاص دادند که به ترتیب نشان دهنده حداکثر و حداقل آسیب وارد شده به غشا می­باشد. با توجه به نتایج به دست آمده، در نهایت رقم ناز چندشاخه، رقم متحمل و رقم نیشابور، رقم حساس به سرما معرفی شدند.

متن کامل [PDF 677 kb]   (834 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: اصلاح نباتات
دریافت: ۱۳۹۵/۸/۱۸ | پذیرش: ۱۳۹۵/۸/۱۸ | انتشار: ۱۳۹۵/۸/۱۸

فهرست منابع
1. Alizadeh, A. 1996. The relationship between soil, water and plant. Mashhad Press, Mashhad, Iran, 744 pp. (In Persian).
2. Ashraf, M. and Q. Ali. 2008. Relative membrane permeability and activities of some antioxidant enzymes as the key determinants of salt tolerance in canola (Brassica napus L.). Journal of Environmental and Experimental Botany, 63: 266-273. [DOI:10.1016/j.envexpbot.2007.11.008]
3. Bakalova, S., A. Nikolova and D. Nedeva. 2004. Isoenzyme profiles of peroxidase, catalase and superoxide dismutase as affected by dehydration stress and ABA during germination of wheat seeds. Journal of Plant Physiology, 30: 64-77.
4. Bates, L.S., R.P. Waldern and I.D. Tear. 1973. Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant Soil, 39: 205-207. [DOI:10.1007/BF00018060]
5. Bhattacharjee, S. and A.K. Mukherjee. 2002. Salt stress induced cytosolute accumulation, antioxidant response and membrane deterioration in three rice cultivars during early germination. Seed Science and Technology, 30: 279-287.
6. Davey, M.W., E. Stals, B. Panis, J. Keulemans and R.L. Swennen. 2005. High throughput of malondialdehyde in plant tissues. Analytical Biochemistry, 347: 201-207. [DOI:10.1016/j.ab.2005.09.041]
7. Differentially regulated in response to high-salinity, cold and drought. Bio Med Central Genomics, 8: 303.
8. Distelbarth, H., T. Neagele and A.G. Heyer. 2012. Responses of antioxidant enzymes to cold and high light are not correlated to freezing tolerance in natural accessions of Arabidopsis thaliana. Plant Biology ISSN, 1435-8603.
9. Esfandiari, E., F. Shekari and M. Esfandiari. 2007. The effect of salt stress on antioxidant enzymes activity and lipid peroxidation on the wheat seedling. Journal of Notulae Botanicae Horti Agribotanici Cluj-Napoca, 35: 48-56.
10. Filippi, L.D., M. Fournier, E. Cameroni, P. Linder, C.D. Virgilio, M. Foti and O. Deloche. 2007. Membrane stress is coupled to a rapid translational control of gene expression in chlorpromazine-treated cells. Curr Genetics, 52: 171-185. [DOI:10.1007/s00294-007-0151-0]
11. Grmaetxe, I., P.R. Escurede and C. Arrese-Igor. 1998. Oxidative damage in pea plants exposed to water deficit or paraquat. Plant Physiology, 116: 173-181. [DOI:10.1104/pp.116.1.173]
12. Guy, C. 1999. Molecular responses of plants to cold shock and cold acclimation. Journal of Molecular Microbiology and Biotechnology, 1: 231-242.
13. Hai-qing, Z., Z. Ying-bin, X. Guo-chao and X. Yuan-fu. 2007. Effect and Mechanism of Cold Tolerant Seed-Coating Agents on the Cold Tolerance of Early lndica Rice Seedlings. Agricultural Sciences in China, 6: 792-801. [DOI:10.1016/S1671-2927(07)60114-X]
14. Huilian, U., I. Shii and H. Xu. 1996. Wheat cultivar differences in photosynthetic response to low soil water potentials, maintainance of photosynthesis and leaf water potential. Japanese Journal of Crop Science, 65: 509-517. [DOI:10.1626/jcs.65.509]
15. Hussein, S.H. and N. Terry. 2002. Phyto-monitoring the unique colonization of oil-contaminated saline environment by Limoniastrum monopetalum L. Boiss in Egypt. Journal of Environment International, 28: 127-135. [DOI:10.1016/S0160-4120(02)00016-8]
16. Khajeh Poor, M.R. 2012. Industrial plants. 5th edn. Isfahan University Press, Isfahan, Iran, 564 pp (In Persian).
17. Kirnak, H., C. Kaya, I. TAS and D. Higgs. 2001. The influence of water deficit on vegetative growth, physiology, fruit yield and quality in egg plants. Plant Physiology, 27: 34-46.
18. Levitt, J. 1980. Salt and ion stresses response of plant to environmental stresses. Academic press, 2: 365-88.
19. Loggini, B., A. Scartazza, E. Brugnoli and F. Navari-Izzo. 1999. Antioxidative defense system pigment composition and photosynthetic efficiency in two wheat cultivars subjected to Drought. Plant Physiology, 119: 1091-1100. [DOI:10.1104/pp.119.3.1091]
20. Mantri, N.L., R. Ford, T.E. Coram and E.C.K. Pang. 2007. Transcriptional profiling of chickpea genes
21. Pandey, R. and R.M. Agarwal. 1998. Water stress-induced change in proline contents and nitrate reductase activity in rice under light and dark condition. Physiology and Molecular Biology of Plants, 4: 53-57.
22. Pennycooke, J.C., S. Cox and C. Stushnoff. 2004. Relatioship of cold acclimation, total phenolic content and antioxidant capacity with chilling tolerance in petunia (Petinia hybrida). Journal of Environmental & Experimental Botany, 53: 225-232. [DOI:10.1016/j.envexpbot.2004.04.002]
23. Peretiemo-Clarke, B.O. and F.I. Achuba. 2007. Phytochemical effect of petroleum on peanut (Arachis hypogea) seedlings. Journal of Plant Pathology, 6: 179-182. [DOI:10.3923/ppj.2007.179.182]
24. Porra, R.J. 2002. The cheque red history of the development and use of simultaneous equations for the accurate determination of chlorophylls a and b. Photosynthesis Research, 73: 149-156. [DOI:10.1023/A:1020470224740]
25. Rahimizadeh, M., D. Habibi, H. Madani, H. Mohammadi, A. Mehraban and A.M. Sabet. 2007. The effect of micronutrients on antioxidant enzymes metabolism in sunflower (Helianthus annuus L.) under drought stress. Journal of Helia, 47: 167-174. [DOI:10.2298/HEL0747167R]
26. Smirnoff, N. and Q.J. Cumbes. 1989. Hydroxyl radical scavenging activity of compatible solutes. Journal of Phytochemistry, 28: 1057-1060. [DOI:10.1016/0031-9422(89)80182-7]
27. Sofo, A., B. Dichio, C. Xiloyannis and A. Masia. 2004. Effects of different irradiance levels on some antioxidant enzymes and on malondialdehyde content during re-watering in olive tree. Plant Science, 166: 293-30. [DOI:10.1016/j.plantsci.2003.09.018]
28. Stewart, R.C. and J.D. Beweley. 1980. Lipid peroxidation associated with accelerated aging of soybean axes. Plant Physiology, 65: 245-248. [DOI:10.1104/pp.65.2.245]
29. Teulate, B., D. Rekika, M. Nachit and P. Monnerux. 1997. Comparative osmotic adjustments in barley and tetraploid wheats. Plant Breeding, 116: 519-523. [DOI:10.1111/j.1439-0523.1997.tb02183.x]
30. Verbruggen, N. and C. Hermans. 2008. Proline accumulation in plants. Journal of Amino Acids, 35: 753-759. [DOI:10.1007/s00726-008-0061-6]
31. Wang, X., G. Fang, Y. Li, M. Ding, H. Gong and Y. Li. 2013. Differential antioxidant responses to cold stress in cell suspension cultures of two subspecies of rice. Plant Cell Tissue Organisms Culture, 113: 353-361. [DOI:10.1007/s11240-012-0273-z]
32. Xin, Z. and J. Browse. 1998. Eskimo1 mutants of Arabidopsis are constitutively freezing-tolerant. Proceedings of the National Academy of Sciences USA, 95: 7799-7804. [DOI:10.1073/pnas.95.13.7799]
33. Xin, Z. and J. Browse. 2000. Cold comfort farm: the acclimation of plants to freezing temperatures. Plant Cell Environ, 23: 893-902. [DOI:10.1046/j.1365-3040.2000.00611.x]
34. Xin, Z., A. Mandaokar, J. Chen, R.L. Last and J. Browse. 2007. Arabidopsis ESK1 encodes a novel regulator of freezing tolerance. The Plant Journal, 49: 786-799. [DOI:10.1111/j.1365-313X.2006.02994.x]
35. Yan, S.P., Q.Y. Zhang, Z.C. Su, W.A. Tang and W.N. Sun. 2005. Comparative proteomic analysis provides new Insights into Chilling Stress Responses in Rice. American Society for Biochemistry and Molecular Biology, Inc.
36. Zhang, X.Y., C. Liang, G.P. Wang, Y. Luo and W. Wang. 2010. The protection of wheat plasma membrane under cold stress by glycine betaine overproduction. Biologia Plantarum, 54: 83-88. [DOI:10.1007/s10535-010-0012-4]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2019 All Rights Reserved | Journal of Crop Breeding

Designed & Developed by : Yektaweb