دوره 18، شماره 1 - ( بهار 1405 )
جلد 18 شماره 1 صفحات 28-16 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Raeisi Sadati S Y, Jahanbakhsh-Godekahriz S, Tobeh A, Farzaneh S. (2026). The Effect of Foliar Application of Selenium Nanoparticles and Algal Extract (Ascophyllum nodosum) on Fennel Plants under Chromium Stress. J Crop Breed. 18(1), 16-28. doi:10.61882/jcb.2026.1585
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1585-fa.html
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1585-fa.html
رئیسی ساداتی سیده یلدا، جهانبخش گده کهریز سدابه، توبه احمد، فرزانه سلیم.(1405). بررسی اثر محلول پاشی نانوذره سلنیوم و عصاره جلبکی (Ascophyllum nodosum) در گیاه رازیانه تحت تنش کروم پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی 18 (1) :28-16 10.61882/jcb.2026.1585
1- گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
چکیده: (362 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه و هدف: با توجه به آلودگی گیاهان دارویی به فلزات سنگین و پتانسیل بالای این گیاهان در جذب و انتقال آنها به بخش های قابل استفاده و به دنبال آن عوارض جانبی مربوط به حضور فلزات سنگین در داروهای گیاهی استفاده شده در کشور ایران، امروزه محققین بهدنبال راهکاری هستند که اثرات سمی ناشی از فلزات سنگین خاک را کاهش دهد و بتوانند کیفیت محصولات کشت شده در خاکهای آلوده به فلزات سنگین را بهبود بخشند. کاربرد نانوذرات مقرون به صرفه و ایمن از نظر زیست محیطی برای اصلاح خاک های آلوده به فلز و جذب زیستی عناصر کمیاب و بالقوه سمی از طریق ریزجلبک ها یا عصاره جلبکی در گذشته و اخیر مورد توجه زیادی قرار گرفته است. لذا، این آزمایش به منظور تغذیه رازیانه با محرکهای زیستی و بررسی برخی پارامترهای فیزیولوژیک و تیز کاهش جذب فلز سنگین کروم و در نهایت حفظ کمیت و کیفیت رازیانه (vulgare Foeniculum) انجام شد.
مواد و روشها: این پژوهش بهصورت فاکتوریل در قالب طرح بلوک کامل تصادفی با سه تکرار تحت شرایط گلخانه ای در سال 1402-1403 اجرا شد. تیمارها شامل تنش کروم در دو سطح (صفر (شاهد) و 100 میلیگرم در کیلوگرم خاک) و محلولپاشی در سه سطح (شاهد، عصاره جلبکی با غلظت 1 میلیگرم در لیتر و نانوذره سلنیوم با غلظت 20 میلیگرم در لیتر) بودند. در مرحله چهاربرگی، محلول پاشی برگی در سه سطح صفر، عصاره جلبکی (یک میلی گرم در لیتر) و نانوذره سلنیوم (20 میلی گرم در لیتر) سه بار با فاصله زمانی 15 روز انجام شد و ده روز بعد از قرارگرفتن گیاه در تنش مورد نظر، نمونهبرداری از نمونههای شاهد و تیماری به منظور بررسی پارامترهای فیزیولوژیک گیاه انجام گرفت.
یافتهها: نتایج حاصل از تجزیه واریانس اثر متقابل دوجانبه محلولپاشی × تنش فلز سنگین در رابطه با آنزیمهای آنتیاکسیدان کاتالاز و آنزیم سوپراکسید دیسموتاز معنیدار بودند. نتایج بررسی اثر متقابل نانوذره سلنیوم × عصاره جلبک سبز برای صفات میزان اسید آمینه پرولین و رنگیزههای کلروفیل a، کلروفیل b و کلروفیل کل معنی دار بودند، اما برای آنزیمهای آنتیاکسیدان کاتالاز و سوپراکسید دیسموتاز و نشت الکترولیت و مالوندیآلدهید اثر معنیداری نداشت. غلظت مالون دیآلدهید، آنزیمهای آنتیاکسیدان کاتالاز و سوپراکسید دیسموتاز، محتوای پرولین و درصد نشت یونی تحت تنش کروم افزایش معنی داری یافتند، درحالی که محتوای رنگیزه های فتوسنتزی نسبت به شاهد کاهش نشان دادند. کاربرد محرک های زیستی، فعالیت آنزیم های آنتی اکسیدان کاتالاز و سوپراکسید دیسموتاز، میزان پرولین و غلظت رنگیزه های فتوسنتزی را نسبت به شاهد افزایش داد، اما محتوای مالوندیآلدهید نسبت به شرایط کنترل کاهش یافت. در گیاه رازیانه فعالیتهای آنزیم کاتالاز و سوپراکسید دیسموتاز به ترتیب در برهم کنش کروم با محلول پاشی عصاره جلبکی یک میلی گرم در لیتر، محلول پاشی نانوذره سلنیوم 20 میلی گرم در لیتر و برهم کنش آنها نسبت به شاهد افزایش نشان دادند. بیشترین درصد فعالیت آنزیمهای کاتالاز و سوپراکسید دیسموتاز مربوط به تنش کروم و کمترین غلظت این آنزیمها مربوط به شاهد بود. بیشترین فعالیت آنزیم های آنتیاکسیدان تحت تنش کروم بعد از شاهد به محلول پاشی با عصاره جلبکی اختصاص داشت. اثر متقابل نانوذره سلنیوم و عصاره جلبکی موجب کاهش محتوای مالون دی آلدهید و افزایش رنگیزه های فتوسنتزی شد. همچنین، با محلول پاشی نانوذره سلنیوم 20 میلی گرم در لیتر، عصاره جلبکی یک میلی گرم بر لیتر و برهم کنش آنها محتوای پرولین نسبت به شاهد افزایش یافت. در نتیجه، خسارت تاشی از تنش فلز سمی کروم با تقویت سیستم آنتی اکسیدانی و فتوسنتزی گیاه رازیانه توسط نانوذره سلنیوم و عصاره جلبکی تعدیل یافت.
نتیجهگیری: به طور کلی در بین محرک های زیستی مورد بررسی تحت تنش کروم، محلول پاشی با عصاره جلبکی نسبت به نانوذره سلنیوم، موجب تقویت سیستم آنتی اکسیدانی گیاه رازیانه شد و از این طریق توانست تجمع رادیکال های آزاد را مهار کند و نیز با کاهش محتوای مالون دیآلدهید یکپارچگی غشا را در شرایط تنش کروم حفظ نماید.
مقدمه و هدف: با توجه به آلودگی گیاهان دارویی به فلزات سنگین و پتانسیل بالای این گیاهان در جذب و انتقال آنها به بخش های قابل استفاده و به دنبال آن عوارض جانبی مربوط به حضور فلزات سنگین در داروهای گیاهی استفاده شده در کشور ایران، امروزه محققین بهدنبال راهکاری هستند که اثرات سمی ناشی از فلزات سنگین خاک را کاهش دهد و بتوانند کیفیت محصولات کشت شده در خاکهای آلوده به فلزات سنگین را بهبود بخشند. کاربرد نانوذرات مقرون به صرفه و ایمن از نظر زیست محیطی برای اصلاح خاک های آلوده به فلز و جذب زیستی عناصر کمیاب و بالقوه سمی از طریق ریزجلبک ها یا عصاره جلبکی در گذشته و اخیر مورد توجه زیادی قرار گرفته است. لذا، این آزمایش به منظور تغذیه رازیانه با محرکهای زیستی و بررسی برخی پارامترهای فیزیولوژیک و تیز کاهش جذب فلز سنگین کروم و در نهایت حفظ کمیت و کیفیت رازیانه (vulgare Foeniculum) انجام شد.
مواد و روشها: این پژوهش بهصورت فاکتوریل در قالب طرح بلوک کامل تصادفی با سه تکرار تحت شرایط گلخانه ای در سال 1402-1403 اجرا شد. تیمارها شامل تنش کروم در دو سطح (صفر (شاهد) و 100 میلیگرم در کیلوگرم خاک) و محلولپاشی در سه سطح (شاهد، عصاره جلبکی با غلظت 1 میلیگرم در لیتر و نانوذره سلنیوم با غلظت 20 میلیگرم در لیتر) بودند. در مرحله چهاربرگی، محلول پاشی برگی در سه سطح صفر، عصاره جلبکی (یک میلی گرم در لیتر) و نانوذره سلنیوم (20 میلی گرم در لیتر) سه بار با فاصله زمانی 15 روز انجام شد و ده روز بعد از قرارگرفتن گیاه در تنش مورد نظر، نمونهبرداری از نمونههای شاهد و تیماری به منظور بررسی پارامترهای فیزیولوژیک گیاه انجام گرفت.
یافتهها: نتایج حاصل از تجزیه واریانس اثر متقابل دوجانبه محلولپاشی × تنش فلز سنگین در رابطه با آنزیمهای آنتیاکسیدان کاتالاز و آنزیم سوپراکسید دیسموتاز معنیدار بودند. نتایج بررسی اثر متقابل نانوذره سلنیوم × عصاره جلبک سبز برای صفات میزان اسید آمینه پرولین و رنگیزههای کلروفیل a، کلروفیل b و کلروفیل کل معنی دار بودند، اما برای آنزیمهای آنتیاکسیدان کاتالاز و سوپراکسید دیسموتاز و نشت الکترولیت و مالوندیآلدهید اثر معنیداری نداشت. غلظت مالون دیآلدهید، آنزیمهای آنتیاکسیدان کاتالاز و سوپراکسید دیسموتاز، محتوای پرولین و درصد نشت یونی تحت تنش کروم افزایش معنی داری یافتند، درحالی که محتوای رنگیزه های فتوسنتزی نسبت به شاهد کاهش نشان دادند. کاربرد محرک های زیستی، فعالیت آنزیم های آنتی اکسیدان کاتالاز و سوپراکسید دیسموتاز، میزان پرولین و غلظت رنگیزه های فتوسنتزی را نسبت به شاهد افزایش داد، اما محتوای مالوندیآلدهید نسبت به شرایط کنترل کاهش یافت. در گیاه رازیانه فعالیتهای آنزیم کاتالاز و سوپراکسید دیسموتاز به ترتیب در برهم کنش کروم با محلول پاشی عصاره جلبکی یک میلی گرم در لیتر، محلول پاشی نانوذره سلنیوم 20 میلی گرم در لیتر و برهم کنش آنها نسبت به شاهد افزایش نشان دادند. بیشترین درصد فعالیت آنزیمهای کاتالاز و سوپراکسید دیسموتاز مربوط به تنش کروم و کمترین غلظت این آنزیمها مربوط به شاهد بود. بیشترین فعالیت آنزیم های آنتیاکسیدان تحت تنش کروم بعد از شاهد به محلول پاشی با عصاره جلبکی اختصاص داشت. اثر متقابل نانوذره سلنیوم و عصاره جلبکی موجب کاهش محتوای مالون دی آلدهید و افزایش رنگیزه های فتوسنتزی شد. همچنین، با محلول پاشی نانوذره سلنیوم 20 میلی گرم در لیتر، عصاره جلبکی یک میلی گرم بر لیتر و برهم کنش آنها محتوای پرولین نسبت به شاهد افزایش یافت. در نتیجه، خسارت تاشی از تنش فلز سمی کروم با تقویت سیستم آنتی اکسیدانی و فتوسنتزی گیاه رازیانه توسط نانوذره سلنیوم و عصاره جلبکی تعدیل یافت.
نتیجهگیری: به طور کلی در بین محرک های زیستی مورد بررسی تحت تنش کروم، محلول پاشی با عصاره جلبکی نسبت به نانوذره سلنیوم، موجب تقویت سیستم آنتی اکسیدانی گیاه رازیانه شد و از این طریق توانست تجمع رادیکال های آزاد را مهار کند و نیز با کاهش محتوای مالون دیآلدهید یکپارچگی غشا را در شرایط تنش کروم حفظ نماید.
فهرست منابع
1. Ahmad, B., Shabbir, A., Jaleel, H., Khan, M.M.A., & Sadiq, Y. (2018). Efficacy of titanium dioxide nanoparticles in modulating photosynthesis, peltate glandular trichomes and essential oil production and quality in Mentha piperita L. Current Plant Biology, 13, 6-15. [DOI:10.1016/j.cpb.2018.04.002]
2. Aroiee, H., Shekari, L., & Mirshekari, A. (2019). Effects of selenium on damage of heavy metals in germination, growth and antioxidant activities of cucumber (Cucumis sativus L.) seedling. Iranian Journal of Seed Science and Research, 6(2), 269-286.
3. Amer, H.M., Marrez, D.A., Salama, A.B., Wahba, H.E., & Khalid, K.A. (2019). Growth and chemical constituents of cardoon plant in response to foliar application of various algal extracts. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 21, 101336. [DOI:10.1016/j.bcab.2019.101336]
4. Ahanger, M.A., Tomar, N.S., Tittal, M., Argal, S., & Agarwal, R. (2017). Plant growth under water/salt stress: ROS production; antioxidants and significance of added potassium under such conditions. Physiology and Molecular Biology of Plants, 23, 731-744. [DOI:10.1007/s12298-017-0462-7]
5. Akbar, S.A., & Khairunnisa, K. (2024). Seaweed-based biosorbent for the removal of organic and inorganic contaminants from water: a systematic review. In BIO Web of Conferences (Vol. 87, p. 2011). EDP Sciences. [In Persian] [DOI:10.1051/bioconf/20248702011]
6. Abdollahi, A., Barin, M., Soltani, A.A., Torabi Giglou, M., Behrouz Ismailpour, B., & Tahami, S.K. (2023). Evaluation of influence of selenium foliar application on growth and physiological characteristics of basil (Ocimum basilicum L.) in arsenic-contaminated soil. Journal of Vegetables Sciences, 7(2), 59-76. [In Persian]
7. Arnon, D.I. (1949). Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24(1), 1-15. [DOI:10.1104/pp.24.1.1]
8. Annan, K., Dickson, R.A., Amponsah, I.K., & Nooni, I.K. (2013). The heavy metal contents of some selected medicinal plants sampled from different geographical locations. Pharmacognosy Research, 5(2), 103. [DOI:10.4103/0974-8490.110539]
9. Balakhnina, T.I., & Nadezhkina, E.S. (2017). Effect of selenium on growth and antioxidant capacity of Triticum aestivum L. during development of lead-induced oxidative stress. Russian Journal of Plant Physiology, 64, 215-223. [DOI:10.1134/S1021443717010022]
10. Babashpour-Asl, M., Farajzadeh-Memari-Tabrizi, E., & Yousefpour-Dokhanieh, A. (2022). Foliar-applied selenium nanoparticles alleviate cadmium stress through changes in physio-biochemical status and essential oil profile of coriander (Coriandrum sativum L.) leaves. Environmental Science and Pollution Research, 29(53), 80021-80031. [DOI:10.1007/s11356-022-19941-1]
11. Bates, L.S., Waldren, R.P.A., & Teare, I.D. (1973). Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and Soil, 39, 205-207. [DOI:10.1007/BF00018060]
12. Ben Hamed, K., Castagna, A., Salem, E., Ranieri, A., & Abdelly, C. (2007). Sea fennel (Crithmum maritimum L.) under salinity conditions: a comparison of leaf and root antioxidant responses. Plant Growth Regulation, 53, 185-194. [DOI:10.1007/s10725-007-9217-8]
13. Bhunia, B., Uday, U. S.P., Oinam, G., Mondal, A., Bandyopadhyay, T.K., & Tiwari, O.N. (2018). Characterization, genetic regulation and production of cyanobacterial exopolysaccharides and its applicability for heavy metal removal. Carbohydrate Polymers, 179, 228-243. [DOI:10.1016/j.carbpol.2017.09.091]
14. Bilal, M., Rasheed, T., Sosa-Hernández, J.E., Raza, A., Nabeel, F., & Iqbal, H.M. (2018). Biosorption: an interplay between marine algae and potentially toxic elements a review. Marine Drugs, 16(2), 65. [DOI:10.3390/md16020065]
15. Cao, B., Zhang, Q., Guo, J., Guo, R., Fan, X., & Bi, Y. (2021). Synthesis and evaluation of Grateloupia Livida polysaccharides-functionalized selenium nanoparticles. International Journal of Biological Macromolecules, 191, 832-839. [DOI:10.1016/j.ijbiomac.2021.09.087]
16. Djanaguiraman, M., Belliraj, N., Bossmann, S.H., & Prasad, P.V. (2018). High-temperature stress alleviation by selenium nanoparticle treatment in grain sorghum. ACS Omega, 3(3), 2479-2491. [DOI:10.1021/acsomega.7b01934]
17. Duan, C., Fang, L., Yang, C., Chen, W., Cui, Y., & Li, S. (2018). Reveal the response of enzyme activities to heavy metals through in situ zymography. Ecotoxicology and Environmental Safety, 156, 106-115. [DOI:10.1016/j.ecoenv.2018.03.015]
18. El-Sayed, A.E.K.B., Aboulthana, W.M., El-Feky, A.M., Ibrahim, N.E., & Seif, M.M. (2018). Bio and phyto-chemical effect of Amphora coffeaeformis extract against hepatic injury induced by paracetamol in rats. Molecular Biology Reports, 45, 2007-2023. [DOI:10.1007/s11033-018-4356-8]
19. El Khattabi, O., El Hasnaoui, S., Toura, M., Henkrar, F., Collin, B., Levard, C., & Fahr, M. (2023). Seaweed extracts as promising biostimulants for enhancing lead tolerance and accumulation in tomato (Solanum lycopersicum). Journal of Applied Phycology, 35(1), 459-469. [DOI:10.1007/s10811-022-02849-1]
20. El-Sharkawy, M., El-Beshsbeshy, T., Al-Shal, R., & Missaoui, A. (2017). Effect of plant growth stimulants on alfalfa response to salt stress. Agricultural Sciences, 8(4), 267-291. [DOI:10.4236/as.2017.84020]
21. Esmaielpour, B., & Fatemi, H. (2020). Effects of seaweed extract on physiological and biochemical characteristics of basil (Ocimum basilicum L.) under water-deficit stress conditions. Journal of Science and Technology of Greenhouse Culture, 11(9), 59-69. [In Persian] [DOI:10.47176/jspi.11.1.10288]
22. Fang, Z., Wang, Q., Zhang, C., Li, S., Li, S., Wang, X., & Li, Z. (2022). Effects of Cr6+ stress on chromium chemical speciation distribution and bacterial community structure in the Coix lacryma-jobi L. constructed wetlands. Environmental Pollutants and Bioavailability, 34(1), 433-445. [DOI:10.1080/26395940.2022.2128427]
23. Fatemi, H., Esmaielpour, B., Sefidkon, F., Soltani, A.A., & Nematollahzadeh, A. (2020). How mycorrhiza symbiosis help coriander (Coriandrum sativum L.) plants grow better under contaminated soil? Journal of Plant Nutrition, 43(13), 2040-2053. [DOI:10.1080/01904167.2020.1766069]
24. Giannopolitis, C.N., & Ries, S.K. (1977). Superoxide dismutases: I. Occurrence in higher plants. Plant Physiology, 59(2), 309-314. [DOI:10.1104/pp.59.2.309]
25. Hassan, R.H., El-Said, N.A., & El Sayed, A.B. (2022). Effect of algae extracts on growth, yield, and essential oil of fennel (Foeniculum vulgare Mill.) plant. Scientific Journal of Flowers and Ornamental Plants, 9(4), 363-372. [DOI:10.21608/sjfop.2022.293099]
26. Habibi, G., Ghorbanzade, P., & Abedini, M. (2016). Effects of selenium application on physiological parameters of Melissa officinalis L. plants. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants Research, 32(4), 698-715.
27. Heath, R.L., & Packer, L. (1968). Photoperoxidation in isolated chloroplasts: I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry and Biophysics, 125(1), 189-198. [DOI:10.1016/0003-9861(68)90654-1]
28. Haghpanah, M., Jelodar, N.B., Zarrini, H.N., Pakdin-Parizi, A., & Dehestani, A. (2024). New insights into azelaic acid-induced resistance against Alternaria Solani in tomato plants. BMC Plant Biology, 24(1), 687. [DOI:10.1186/s12870-024-05397-7]
29. Haghpanah, M., Hashemipetroudi, S., Arzani, A., & Araniti, F. (2024). Drought tolerance in plants: physiological and molecular responses. Plants, 13(21), 2962. [DOI:10.3390/plants13212962]
30. Jahanbakhsh Godehkahriz, S., & Raeisi Sadati, S.Y. (2023). Evaluation of important physiological traits of Morvared and Falat bread wheat cultivars under heavy metals cadmium and mercury. Journal of Plant Process and Function, 12(57), 19-36. [In Persian]
31. Kammath, A.J., Nair, B., P.S., & Nath, L.R. (2021). Curry versus cancer: Potential of some selected culinary spices against cancer with in vitro, in vivo, and human trials evidences. Journal of Food Biochemistry, 45(3), e13285. [DOI:10.1111/jfbc.13285]
32. Kumari, J., Udawat, P., Dubey, A.K., Haque, M.I., Rathore, M.S., & Jha, B. (2017). Overexpression of SbSI-1, a nuclear protein from Salicornia brachiata confers drought and salt stress tolerance and maintains photosynthetic efficiency in transgenic tobacco. Frontiers in Plant Science, 8, 1215. [DOI:10.3389/fpls.2017.01215]
33. Khosropour, E., Weisany, W., Tahir, N.A.R., & Hakimi, L. (2022). Vermicompost and biochar can alleviate cadmium stress through minimizing its uptake and optimizing biochemical properties in Berberis integerrima bunge. Environmental Science and Pollution Research, 29(12), 17476-17486. [DOI:10.1007/s11356-021-17073-6]
34. Li, Y., He, N., Hou, J., Xu, L., Liu, C., Zhang, J., & Wu, X. (2018). Factors influencing leaf chlorophyll content in natural forests at the biome scale. Frontiers in Ecology and Evolution, 6, 64. [DOI:10.3389/fevo.2018.00064]
35. Lajayer, B.A., Ghorbanpour, M., & Nikabadi, S. (2017). Heavy metals in contaminated environment: destiny of secondary metabolite biosynthesis, oxidative status and phytoextraction in medicinal plants. Ecotoxicology and Environmental Safety, 145, 377-390. [DOI:10.1016/j.ecoenv.2017.07.035]
36. Maleki, M., Ghorbanpour, M., & Kariman, K. (2017). Physiological and antioxidative responses of medicinal plants exposed to heavy metals stress. Plant Gene, 11, 247-254. [DOI:10.1016/j.plgene.2017.04.006]
37. Mokhtari, L., & Ghoreishi, S.M. (2019). Supercritical carbon dioxide extraction of trans-anethole from Foeniculum vulgare (fennel) seeds: Optimization of operating conditions through response surface methodology and genetic algorithm. Journal of CO2 Utilization, 30, 1-10. [DOI:10.1016/j.jcou.2018.12.018]
38. Moharramnejad, S., Sofalian, O., Valizadeh, M., Asghari, A., Shiri, M., & Ashraf, M. (2019). Response of maize to field drought stress: oxidative defense system, osmolytes' accumulation and photosynthetic pigments. Pakistan Journal of Botany, 51(3), 799-807. [DOI:10.30848/PJB2019-3(1)]
39. Nie, M., Hu, C., Shi, G., Cai, M., Wang, X., & Zhao, X. (2021). Selenium restores mitochondrial dysfunction to reduce Cr-induced cell apoptosis in Chinese cabbage (Brassica campestris L. ssp. Pekinensis) root tips. Ecotoxicology and Environmental Safety, 223, 112564. [DOI:10.1016/j.ecoenv.2021.112564]
40. Pal, S. C., Hossain, M.B., Mallick, D., Bushra, F., Abdullah, S.R., Dash, P.K., & Das, D. (2024). Combined use of seaweed extract and arbuscular mycorrhizal fungi for alleviating salt stress in bell pepper (Capsicum annuum L.). Scientia Horticulturae, 325, 112597. [DOI:10.1016/j.scienta.2023.112597]
41. Piršelová, B., Boleček, P., & Gálusová, T. (2016). Effect of cadmium and arsenic on chlorophyll fluorescence of selected soybean cultivars. Russian Journal of Plant Physiology, 63, 469-473. [DOI:10.1134/S1021443716040129]
42. Rizwan, M., Ali, S., Abbas, T., Zia-ur-Rehman, M., Hannan, F., Keller, C., & Ok, Y.S. (2016). Cadmium minimization in wheat: a critical review. Ecotoxicology and Environmental Safety, 130, 43-53. [DOI:10.1016/j.ecoenv.2016.04.001]
43. Rostami, M., Abbaspour, H., Safipour, A., & Taheri, G. (2022). Effect of selenium on growth and some physiological traits of basil under arsenic stress conditions. Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 35(4), 823-835. [In Persian]
44. Raeisi Sadati, S.Y., Raeisi Sadati, F., & Raeisi Sadati, M.R. (2024). Effect of biological stimuli on some biochemical characteristics of fennel plant under cadmium stress. Plant Productions, 47(3), 355-372. [In Persian]
45. Rahman, M.M., Hossain, K.F.B., Banik, S., Sikder, M.T., Akter, M., Bondad, S.E.C., & Kurasaki, M. (2019). Selenium and zinc protections against metal-(loids)-induced toxicity and disease manifestations: a review. Ecotoxicology and Environmental Safety, 168, 146-163. [DOI:10.1016/j.ecoenv.2018.10.054]
46. Rizwan, M., Ali, S., ur Rehman, M.Z., Riaz, M., Adrees, M., Hussain, A., & Rinklebe, J. (2021). Effects of nanoparticles on trace element uptake and toxicity in plants: A review. Ecotoxicology and Environmental Safety, 221, 112437. [DOI:10.1016/j.ecoenv.2021.112437]
47. Sheikhalipour, M., Esmaielpour, B., Behnamian, M., Gohari, G., Giglou, M.T., Vachova, P., & Skalicky, M. (2021). Chitosan-selenium nanoparticle (Cs-Se NP) foliar spray alleviates salt stress in bitter melon. Nanomaterials, 11(3), 684. [DOI:10.3390/nano11030684]
48. Siripornadulsil, S., Traina, S., Verma, D.P.S., & Sayre, R.T. (2002). Molecular mechanisms of proline-mediated tolerance to toxic heavy metals in transgenic microalgae. The Plant Cell, 14(11), 2837-2847. [DOI:10.1105/tpc.004853]
49. Sohrabi, P., Rostami, M., & Javadi, A. (2022). Effects of seaweed extract and nano-zinc oxide on seed germination characteristics and growth of tomato seedling under drought stress conditions. Journal of Plant Process and Function, 11(51), 193-207. [In Persian]
50. Shekari, L., Aroiee, H., Mirshekari, A., & Nemati, H. (2018). Application of selenium in lowering damage of cadmium, nickel andlead stresses on germination and antioxidant activity of cucumberseedlings (Cucumis sativus L.). Journal of Seed Research, 8(2), 55-72. [In Persian]
51. Servin, A.D., & White, J.C. (2016). Nanotechnology in agriculture: next steps for understanding engineered nanoparticle exposure and risk. NanoImpact, 1, 9-12. [DOI:10.1016/j.impact.2015.12.002]
52. Shamsai, A.A., Aran, M., & Fakheri, B.A. (2021). The effect of foliar application of selenium on physiological and biochemical characteristics of rosemary under drought stress. Crop Science Research in Arid Regions, 2(2), 127-140. [In Persian]
53. Tian, B., Qiao, Z., Zhang, L., Li, H., & Pei, Y. (2016). Hydrogen sulfide and proline cooperate to alleviate cadmium stress in foxtail millet seedlings. Plant Physiology and Biochemistry, 109, 293-299. [DOI:10.1016/j.plaphy.2016.10.006]
54. Ulhassan, Z., Gill, R.A., Huang, H., Ali, S., Mwamba, T.M., Ali, B., & Zhou, W. (2019). Selenium mitigates the chromium toxicity in Brassicca napus L. by ameliorating nutrients uptake, amino acids metabolism and antioxidant defense system. Plant Physiology and Biochemistry, 145, 142-152. [DOI:10.1016/j.plaphy.2019.10.035]
55. Vosoughi, N., Gomarian, M., Pirbalouti, A.G., Khaghani, S., & Malekpoor, F. (2018). Essential oil composition and total phenolic, flavonoid contents, and antioxidant activity of sage (Salvia officinalis L.) extract under chitosan application and irrigation frequencies. Industrial Crops and Products, 117, 366-374. [DOI:10.1016/j.indcrop.2018.03.021]
56. Wu, J.T., Hsieh, M.T., & Kow, L.C. (1998). Role of proline accumulation in response to toxic copper in Chlorella sp. (Chlorophyceae) cells. Journal of Phycology, 34(1), 113-117. [DOI:10.1046/j.1529-8817.1998.340113.x]
57. Wang, L., Gao, Y., Wang, X., Qin, Z., Liu, B., Zhang, X., & Wang, G. (2021). Warming enhances the cadmium toxicity on macrophyte Myriophyllum aquaticum (Vell.) Verd. seedlings. Environmental Pollution, 268, 115912. [DOI:10.1016/j.envpol.2020.115912]
58. Xu, C., Qiao, L., Ma, L., Yan, S., Guo, Y., Dou, X., & Roman, A. (2019). Biosynthesis of polysaccharides-capped selenium nanoparticles using Lactococcus lactis NZ9000 and their antioxidant and anti-inflammatory activities. Frontiers in Microbiology, 10, 1632. [DOI:10.3389/fmicb.2019.01632]
59. Xia, Y., & Zweier, J.L. (1997). Measurement of myeloperoxidase in leukocyte-containing tissues. Analytical Biochemistry, 245(1), 93-96. [DOI:10.1006/abio.1996.9940]
60. Zahedi, S. M., Hosseini, M.S., Daneshvar Hakimi Meybodi, N., & Peijnenburg, W. (2021). Mitigation of the effect of drought on growth and yield of pomegranates by foliar spraying of different sizes of selenium nanoparticles. Journal of the Science of Food and Agriculture, 101(12), 5202-5213. [DOI:10.1002/jsfa.11167]
61. Zhang, W., Long, J., Li, J., Zhang, M., Xiao, G., Ye, X., & Zeng, H. (2019). Impact of ZnO nanoparticles on Cd toxicity and bioaccumulation in rice (Oryza sativa L.). Environmental Science and Pollution Research, 26, 23119-23128. [DOI:10.1007/s11356-019-05551-x]
62. Zhang, H., Xu, Z., Guo, K., Huo, Y., He, G., Sun, H., & Sun, G. (2020). Toxic effects of heavy metal Cd and Zn on chlorophyll, carotenoid metabolism and photosynthetic function in tobacco leaves revealed by physiological and proteomics analysis. Ecotoxicology and Environmental Safety, 202, 110856. [DOI:10.1016/j.ecoenv.2020.110856]
63. Zhou, J., Zhang, C., Du, B., Cui, H., Fan, X., Zhou, D., & Zhou, J. (2021). Soil and foliar applications of silicon and selenium effects on cadmium accumulation and plant growth by modulation of antioxidant system and Cd translocation: Comparison of soft vs. durum wheat varieties. Journal of Hazardous Materials, 402, 123546. [DOI:10.1016/j.jhazmat.2020.123546]
64. Zhao, H., Liu, C., Song, J., & Fan, X. (2022). Pilot study of toxicological safety evaluation in acute and 28‐day studies of selenium nanoparticles decorated by polysaccharides from Sargassum fusiforme in Kunming mice. Journal of Food Science, 87(9), 4264-4279. [DOI:10.1111/1750-3841.16289]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
