دوره 15، شماره 46 - ( تابستان 1402 )                   جلد 15 شماره 46 صفحات 217-207 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Mohebodini M, Fathi R. (2023). Evaluation of Morphological and Phytochemical Diversity in Iranian Coriander (Coriandrum sativum L.) Accessions by Multivariate Statistical Analysis. J Crop Breed. 15(46), 207-217. doi:10.61186/jcb.15.46.207
URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1404-fa.html
محب الدینی مهدی، فتحی رقیه. ارزیابی تنوع مورفولوژیکی و فیتوشیمیایی برخی توده‌های گشنیز ایرانی (Coriandrum sativum L.) با استفاده از آنالیز چند متغییره پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی 1402; 15 (46) :217-207 10.61186/jcb.15.46.207

URL: http://jcb.sanru.ac.ir/article-1-1404-fa.html


1- گروه علوم باغبانی، دانشکده‌ی کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، ایران
2- گروه علوم باغبانی، دانشکده‌ی کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
چکیده:   (1556 مشاهده)

چکیده مبسوط
مقدمه و هدف: گیاه گشنیز یکی از گیاهان دارویی معطر یک ساله از خانواده‌ Apiaceae می‌باشد بذر و گیاه این گیاه حاوی اسانس است که در صنایع آرایشی بهداشتی تولید شکلات و نوشیدنی استفاده می شود. این گیاه دارای خاصیت ضد اسپاسم ضد اسهال، ضد رادیکال‌های آزاد اکسیژن و ضد میکروبی می‌باشد. وجود ژرم‌پلاسم گیاهی متنوع از نیازهای اساسی برنامه‌های اصلاحی می‌باشد که امکان تولید ارقام با ویژگی‌های مطلوب را فراهم می‌کند. بنابراین شناسایی ژنوتیپ‌های مختلف به‌عنوان پیش نیاز برنامه های اصلاحی مورد استفاده قرار می گیرد. ویژگی های مورفولوژیکی و فیتوشیمیایی گیاهان دارویی از جمله صفات مهم است که در بررسی تنوع توده‌های گیاهی مورد استفاده قرار می گیرد.
مواد و روش ­ها: برای بررسی تنوع ژنتیکی توده های گشنیز بر اساس صفات مورفولوژیکی، آنتی‌اکسیدانی و فیتوشیمیایی، 12 توده از نقاط مختلف کشور جمع آوری شد. این آزمایش در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار در مزرعه تحقیقاتی دانشگاه محقق اردبیلی در سال 1399 انجام گرفت. صفات مورفولوژیکی و آنتی‌اکسیدانی بررسی شد. همچنین بذر های به‌دست آمده از گیاهان در سایه خشک شدند سپس ۵۰ گرم از بذرهای خشک شده از توده‌های مختلف در معرض استخراج اسانس به‌وسیله‌ی دستگاه کلونجر به‌مدت سه ساعت قرار گرفت. اسانس‌های استخراج شده در شرایط تاریکی و دمای 4 درجه سانتی گراد نگهداری شدند و سپس یک میکرولیتر از آن‌ها به دستگاه کروماتوگراف گازی متصل به اسپکترومتر جرمی تزریق شد تا نوع ترکیبات آن مشخص شود. ترکیبات اسانس با روش طیف سنج جرمی و کتابخانه NIST و Wiley بررسی شدند.
یافته‌ها: نتایج بررسی‌های مورفولوژیکی و آنتی‌اکسیدانی نشان داد که توده‌ی مشهد بیشترین سطح برگ (2/8 سانتی‌متر مربع)، وزن تر و خشک گیاه (به‌ترتیب 4/52 و 0/56 گرم) و وزن تر برگ را داشتند، مشکین شهر و میانه به‌ترتیب بیشترین میزان فعالیت آنتی‌اکسیدانی را داشتند. نتایج بررسی صفات فیتوشیمیایی نشان داد که ترکیبات اسانس توده‌ها تنوع زیادی داشتند و توده‌ی مشهد بیشترین میزان Butanoic acid (2/56 درصد)، Limonene (0/44 درصد)،Linaloloxide (1/7 درصد)،Thymol (0/08 درصد)، Geraniol (0/38 درصد)،alpha.-Methyl-.alpha. (0/54 درصد)،Eicosane (0/16 درصد) و Isophytol (0/2 درصد) را داشت. بیشترین میزان همبستگی بین میزان Isophytol و Geraniol (0/98= r) بود و کمترین میزان همبستگی بین Butanoic acid و Camphor مشاهده شد (0/001= r). تجزیه به عامل‌ها نشان داد که پنج عامل 98/62 درصد واریانس را توجیه ‌کردند. همچنین تجزیه خوشه‌ای بر اساس فاصله‌ی اقلیدسی، توده‌های مورد بررسی را در سه گروه اصلی طبقه‌بندی نمود. براساس نتایج این تحقیق، تنوع ژنتیکی قابل توجهی بین توده‌های گشنیز موجود در ایران وجود دارد.
نتیجه‌گیری: هدف اصلی این پژوهش بررسی تنوع مورفولوژیکی، آنتی‌اکسیدانی و فیتوشیمیایی بین توده‌های ایرانی گشنیز بود. در بین توده‌های مختلف تنوع گسترده‌ای از نظر ترکیبات اسانس مشاهده گردید.


 

متن کامل [PDF 1931 kb]   (637 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: اصلاح نباتات
دریافت: 1401/5/23 | پذیرش: 1401/11/12

فهرست منابع
1. Adiguzel, A., H. Ozer, H. Kilic and B. Cetin. 2007. Screening of antimicrobial activity of essential oil and methanol extract of Satureja hortensis on foodborne bacteria and fungi. Czech Journal of Food Sciences, 25: 81-89. [DOI:10.17221/753-CJFS]
2. Argolo, A., A. Sant'Ana, M. Pletsch and L. Coelho, 2004. Antioxidant activity of leaf extracts from Bauhinia monandra. Bioresource Technology, 95(2): 229-233. [DOI:10.1016/j.biortech.2003.12.014]
3. Azaz D., F. Demirci, F. Satil, M. Kurkcuoglu, K. Husnu and K. Baserc. 2005. In vitro Antimicrobial activity and chemical composition of some satureja essential oils. Flavour and Fragrance Journal, 20(6): 587-591. [DOI:10.1002/ffj.1492]
4. Azizi, A., H. Ardalani and B. Honermeier. 2016. Statistical analysis of the associations between phenolic monoterpenes and molecular markers, AFLPs and SAMPLs in the spice plant Oregano. Herba Polonica, 62: 42-56. [DOI:10.1515/hepo-2016-0010]
5. Bastami, A. and M. Majidian. 2016. Effects of mycorrhiza, phosphatic biofertilizer on photosynthetic pigments and yield in coriander (Coriandrum sativum L.). Journal of Plant Production, 38(4): 49-60.
6. Benzie, I.F. and J.J. Strain, 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of "antioxidant power": The FRAP assay. Analytical Biochemistry, 239(1): 70-76. [DOI:10.1006/abio.1996.0292]
7. Bouyahya, A., J. Abrini, N. Dakka and Y. Bakri. 2019. Essential oils of Origanum compactum increase membrane permeability, disturb cell membrane integrity, and suppress quorum-sensing phenotype in bacteria. Journal of Pharmaceutical Analysis, 9: 301-311. [DOI:10.1016/j.jpha.2019.03.001]
8. Burt, S.A. and R.D. Reinders. 2004. Antibacterial activity of selected plant essential oils against Escherichia coli O157:H7. Letters in Applied Microbiology, 36(3): 162-167. [DOI:10.1046/j.1472-765X.2003.01285.x]
9. Crossa, J., P. Perez-Rodríguez, J. Cuevas, O. Montesinos-Lopez and D. Jarquín. 2017. Genomic selection in plant breeding: methods, models, and perspectives. Trends in plant science, 22(11): 961-975.‌ [DOI:10.1016/j.tplants.2017.08.011]
10. El-Gohary, A.E., H.M. Amer, A.B. Salama, H.E. Wahba and K.A. Khalid. 2020. Characterization of the essential oil components of adapted Salvia sclarea L. (Clary sage) plant under egyptian environmental conditions. Journal of Essential Oil Bearing Plants, 23(4): 1-7. [DOI:10.1080/0972060X.2020.1818635]
11. EL-Mansy, A.B., D. Abd El-Moneim, S. M. ALshamrani, F.A. Alsafhi, M.A. Abdein and A. Ibrahim. 2021. Genetic diversity analysis of tomato (Solanum lycopersicum L.) with morphological, cytological, and molecular markers under heat stress. Horticulturae, 7(4): 65. [DOI:10.3390/horticulturae7040065]
12. Etesami, M.J., A.M. Naji and A. Rezazadeh. 2006. Variety of morphological and agronomic traits of native coriander cultivars. 16th National Congress of Agricultural Sciences and Plant Breeding of Iran, Faculty of Agricultural Sciences and Natural Resources, Khuzestan, Iran.
13. Ghasemi Pirbalouti, A., M. Hashemi and F.T. Ghahfarokhi. 2013. Essential oil and chemical compositions of wild and cultivated Thymus daenensis Celak and Thymus vulgaris L. Industrial Crops and Products, 48: 43-48. [DOI:10.1016/j.indcrop.2013.04.004]
14. Hadian, J., A. Azizi, S. Tabatabaei, M.R. Naghavi, Z. Jamzad and W. Friedt. 2010. Analysis of the genetic diversity and affinities of different Iranian Satureja species based on SAMPL markers. Planta Medica, 76: 1-7. [DOI:10.1055/s-0030-1250063]
15. Hadian, J., M. Hossein Mirjalili, M. Reza Kanani, A. Salehnia and P. Ganjipoor. 2011. Phytochemical and morphological characterization of Satureja khuzistanica Jamzad populations from Iran. Chemistry & Biodiversity, 8: 902-915. [DOI:10.1002/cbdv.201000249]
16. Hadian, J., S.N. Ebrahimi and P. Salehi. 2010. Variability of morphological and phytochemical characteristics among Satureja hortensis L. accessions of Iran. Industrial Crops and Products, 32(1): 62-69. [DOI:10.1016/j.indcrop.2010.03.006]
17. Karimi, E., A. Ghasemnejad and J. Hadian. 2014. Evaluation of morphological diversity and essential oil yield of Satureja mutica Fisch. & C.A. Mey. Populations growing wild in Iran. Journal of Horticulture Forestry and Biotechnology, 18(1): 7- 16.
18. Khadivi-Khub, A., H. Salehi-Arjmand and J. Hadian. 2014. Morphological and phytochemical variation of Satureja bachtiarica populations from Iran. Industrial Crops and Products, 54: 257-265. [DOI:10.1016/j.indcrop.2014.01.039]
19. Khadivi-khub, A., H. Salehi-Arjmand and J. Hadian. 2013. Morphological and phytochemical variation of Satureja bachtiarica populations from Iran. Industrial Crops and Products, 54: 257-265. [DOI:10.1016/j.indcrop.2014.01.039]
20. Khadivi-Khub, A., H. Salehi-Arjmand, K. Movahedi and J. Hadian. 2015. Molecular and morphological variability of Satureja bachtiarica in Iran. Plant systematics and evolution, 301(1): 77-93. [DOI:10.1007/s00606-014-1055-3]
21. Khakshur, A., Q. Karimzadeh and M. Constant. 2016. Investigation of morphological diversity in different ecotype of coriander (C. sativum L.). The second national congress on the development of agricultural sciences and natural resources, Gorgan, Iran) In persian .(
22. Lopez, M., D. Jordn and M. Pascual-Villalobos. 2008. Toxic compounds in essential oils of coriander, caraway and basil active against stored rice pests. Journal of Stored Products Research, 44(3): 273-278. [DOI:10.1016/j.jspr.2008.02.005]
23. Mehdikhani, H., M. Solouki and H. Zeinali, 2013. Study of genetic diversity in Chamomile Landraces (Marticaria aurea) using random and semi-random primers. Journal of Crop Breeding, 5(11): 69-82.
24. Morales-Payan, J. P., and W. Stall 2005. Coriander (Coriandrum sativum) Seed Yield as Affected by Selected Growth Stimulators. HortScience, 40(4): 1120C-1120. [DOI:10.21273/HORTSCI.40.4.1120C]
25. Mulat, M., A. Pandita and F. Khan. 2019. Medicinal plant compounds for combating the multi-drug resistant pathogenic bacteria: a review. Current pharmaceutical biotechnology, 20(3) 183-196.‌ [DOI:10.2174/1872210513666190308133429]
26. Naghavi, M.R., B. Gareyazi and G. Hossaini Salkadeh. 2010. Molucullar markers.Tehran: Publication of Tehran University.
27. Omidbaigi, B.R. 2000. Production and processing of medicinal plants. Volume 2. Tehran Publications. 80 pp.
28. Omidbaigi, B.R. 2005. Production and processing of medicinal plants. Seyed Mohammad Fakhr Tabatabai and Hamidreza Navidi Mehr, 2nd edition, Astan Quds Razavi Publications, 36-78.
29. Reuter-Lorenz, P.A. and K.A. Cappell. 2008‌‎. Neurocognitive aging and the compensation hypothesis. Current ‎Directions in Psychological Science, ‎‌17(3): 177-182. [DOI:10.1111/j.1467-8721.2008.00570.x]
30. Safaiyan, N., N. Alemzadeh Ansari and M. Mousawi. 2015. Collection and evaluation of genetic diversity of iranian coriander landraces using morphological characteristics and antioxidant properties. Iranian Journal of Horticultural Sciences, 45(4): 417-427.
31. Salamati, M.S. and H. Zeinali. 2011. Evaluation of genetic diversity of some Nigella sativa L. genotypes using agro-morphological characteristics. Iranian Journal of medicinal and Aromatic Plants, 29(1): 201-204.
32. Sefc, K.M., M.S. Lopez, F. Lefort and R. Botta. 2000. Microsatellites variability ingrapevine cultivars from different European regions and evaluation of assignment testing to assess the geographic origin of cultivars. Theoretical and Applied Genetics, 100: 498-505 [DOI:10.1007/s001220050065]
33. Sorkheh, K., B. Shiran, M. Khodambashi, H. Moradi,T.M. Gradziel and P. Martinaz Gomez. 2010. Correlations between quantitative tree and fruit almond traits and their implications for breeding. Scientia Horticulture, 125: 323-331. [DOI:10.1016/j.scienta.2010.04.014]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشنامه اصلاح گیاهان زراعی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی: یکتاوب افزار شرق

© 2025 CC BY-NC 4.0 | Journal of Crop Breeding

Designed & Developed by: Yektaweb